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DXY-胰岛的分离与纯化.pdf
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DXY 胰岛 分离 纯化
前 言 胰岛移植中,保证胰岛供体的数量和质量是胰岛移植成功的关键;从事糖尿病研究的实验也常常需要胰岛细胞。因此,早在 20 世纪 60 年代就已经开始了小动物胰岛分离方法的探索,Hellerstrom 等曾直接从有高血糖的肥胖小鼠分离胰岛用于检测酶活性,后来用同样的方法分离正常小鼠、大鼠和豚鼠的胰岛。由于胰岛散在分布于胰腺的外分泌组织中,并与周围组织紧密连接,胰岛的分离过程实际上是将其从富含消化酶的腺泡中分离出来。所以无论使用何种方法,都会不可避免地引起胰腺外分泌部的破坏、释放的多种酶影响胰岛的数量和质量。因此,胰岛分离是组织细胞分离中最困难的,而提取胰岛的方法存在缺欠、胰腺缺血时间过长、损伤和胰岛的纯化方法等,都是影响胰岛得率的重要因素。其中消化胰腺提取胰岛的过程被认为是至关重要的步骤。不仅各种动物的胰岛分离方法不同,同一动物胚胎与成年的分离方法也不同,稍有偏差就可能导致“颗粒无收”。dongwp 1 写在前面的感谢 经过近两个月的工作,这本电子书终于可以和大家见面了。电子书的完成离不开原帖中战友的精彩发言,特别是dongwp 战友的多次精彩解答,也离不开大家的支持。感谢!电子书制作:libiecao 战友 封面制作:libiecao 战友 零余(非 dxyer,友情赞助)电子书整理:小小东方 电子书校对:dongwp 战友 图片提供:dongwp 战友 morgan1980 战友 abob_ren 战友 jinghuanlv 战友 yangjhdoctor 战友 clsun213 战友 knockout 战友 doctorshi 战友 lilianzhang 战友 AZAFIGHTING 战友 小小东方 2 目 录 目 录 一、大鼠、小鼠、胎鼠及成人胰岛分离纯化的基本步骤.4一、大鼠、小鼠、胎鼠及成人胰岛分离纯化的基本步骤.4 大鼠胰岛细胞分离与纯化(小鼠与大鼠同).4 胎小鼠胰岛分离.7 成人胰腺消化、胰岛分离方法.7 人胎胰岛冷冻保存方法.8 胰岛鉴定方法.8 胰岛功能检测.9 二、实例分析.11二、实例分析.11 dongwp战友的胰岛单层细胞照片.11 morgan1980 战友的胰岛分离照片.13 yangjhdoctor战友的胰岛分离照片.16 clsun213 战友的胰岛分离照片及解说.19 战友的胰岛分离照片及点评.20 knockout战友的胰岛分离照片及点评(1).21 knockout战友的胰岛分离照片及点评(2).23 knockout战友的胰岛分离照片及点评(3).26 knockout战友的胰岛分离照片及点评(4).28 knockout战友的胰岛分离照片及点评(5).31 doctorshi战友的胰岛分离照片及点评(1).32 doctorshi战友的胰岛分离照片及点评(2).36 lilianzhang战友的胰岛分离照片及点评.39 AZAFIGHTING战友的胰岛分离照片.41 三、Q&A.42三、Q&A.42 试剂的选择和配制.42 关于胶原酶.42 DTZ的配置.43 其他.44 胰岛的分离纯化具体实施详解.46 胰腺的分离.46 胰岛的分离和纯化.48 其他.54 胰岛的分离纯化个例答疑.55 经验交流.62 3 一、大鼠、小鼠、胎鼠及成人胰岛分离纯化的基本步骤一、大鼠、小鼠、胎鼠及成人胰岛分离纯化的基本步骤 大鼠胰岛细胞分离与纯化(小鼠与大鼠同)1.成年SD大鼠,810 周龄,体重 250300g,10%戊巴比妥钠 40mg/kg肌肉注射麻醉。2.固定四肢成仰卧位,酒精全身消毒,胸腹部备皮后常规碘酒、酒精消毒,腹部“个”切口,分层进入腹腔,牵开肠管,显露胰管及胆总管。3.1 号丝线于胰管紧靠肠壁处结扎(图 1-1),胆总管内插入 4.5-5 号头皮针,丝线结扎固定,切开胸腔,破心放血处死,经胆总管内插管逆行注入预冷的0.5mg/ml胶原酶p溶液 810ml(视个体大小而定)(图 1-2,1-3),使胰腺膨胀,迅速摘取整个胰腺,移入预置 6ml Hanks液的消化瓶中。6ml Hanks液起到水浴的作用,胶原酶在胰腺内消化,不会被稀释。但在振摇后起到稀释作用,使胰岛在振摇时的被进一步消化受到抑制。注意插管必须在紧贴 12 指肠处进针,因为有分支,如果进针靠前会使部分胰腺得不到灌注。插管后应该可以看到胆汁回流。图图 1-1 结扎胰管结扎胰管 dongwp战友提供战友提供 4 图图 1-2 分离胰腺分离胰腺 abob_ren 战友提供战友提供 图图 1-3 刚灌注好的胰腺刚灌注好的胰腺 abob_ren 战友提供战友提供 5 4.38水浴中静止消化 10 分钟,取出置于冰浴中用眼科镊撕碎胰腺,(消化熟练后可免去此步,直接振摇。此步可了解消化的情况,很容易撕碎的表示已达到消化的要求)。移入消化瓶中振荡 15 秒使其呈细砂状,加入 4小牛血清 10ml与 4Hanks 液 30ml 终止消化。振摇时应该用手腕的力用力振摇后呈细小颗粒(泥沙状)。5.用 600m 不锈钢丝网过滤,细胞悬液用 50ml 离心管 1000 rpm 4离心1-2 分钟,弃去上清液,沉淀物加入 4 Hanks 液洗涤,同样方法离心洗涤,加冷 Hanks 液重悬后均分到 2 根 15ml 离心管内,1000 rpm 4离心 2 分钟,弃去上清液。6.沉淀物加 25%Ficoll 4ml 混匀,其上依次分别加入 23%、20%、11%Ficoll溶液和 Hanks 液各 2ml,3000rpm,4离心 20 分钟,吸出 23%20%及 20%11%界面的胰岛,用 4Hanks 液于 50ml 离心管内离心洗涤 2 次备用。胶原酶P配制:在D-Hanks液中加入 7.5 mmol/L CaCl2、10 mmol/L HEPES、0.2%酚红指示剂,用NaOH调PH值(7.8)后储存。临用时取上述配制好的溶液按 0.5 mg/ml加入胶原酶P,0.22um针头滤器过滤除菌后使用。Ficoll 400 配制:Ficoll配制:称取Ficoll 100g,加 250ml Hanks液(不含CaCl2、NaHCO),待全部溶解后用上述Hanks液定容到 400ml,此为 25%Ficoll;充分混匀后取 92 ml,加上述Hanks液定容到 100ml,此为 23%Ficoll;取 80ml用上述Hanks液定容到100ml,此为 20%Ficoll;取 44ml用上述Hanks液定容到 100ml,此为 11%Ficoll。全部配制完成后高压或煮沸灭菌,4保存。1、Ficoll 100g+Hanks溶液 200ml,完全溶解后加Hanks至 400ml即为 25%Ficoll溶液。2、25%Ficoll 92ml+Hanks 8ml 即为 23%Ficoll溶液。3、25%Ficoll 80ml+Hanks 20ml 即为 20%Ficoll溶液。4、25%Ficoll 44ml+Hanks 56ml 即为 11%Ficoll溶液。附:Hanks 成份剂量表 药物 剂量(g)NaCl 8.0 KCl 0.4 MgSO47H2O 0.1 MgCl26H2O 0.1 Na2HPO42H2O 0.06 KH2PO42H2O 0.06 葡萄糖 0.3 蒸馏水 1000ml CaCl2 1.85 NaHCO3 0.35 D-hanks100ml 液体里,加氯化钙 7.5x110=825mg/L=82.5mg/100ml 6 配方:药物 剂量(g)NaCL 8.0g KCL 0.4g Na2HPO4.12H2O 0.06g KH2PO4 0.06g NaHCO3 0.35g 葡萄糖 0.55g HEPES 2.38g 溶于 800ml 双蒸水中。无水 CaCl2-0.825g,溶于 100ml 双蒸水中。(酚红 1%-4ml,加或不加都可以)1N NaOH 调 pH7.6 定容至 1000ml。PH 值是 7.8 是参考文献的,在使用中不容易掌握,稍过就会产生沉淀,冻存更易发生。后降低到 7.6,发现消化没明显差异,但不会发生沉淀的情况,所以建议用 pH 7.6。胎小鼠胰岛分离 剪碎后加胶原酶(0.5mg/ml),37 度振荡消化 8 分钟,弃上清,加胶原酶,37度振荡消化 8 分钟,吸出细胞悬液,在悬液中加血清和冷 Hanks 液终止消化,沉淀加胶原酶继续 37 度振荡消化 8 分钟,与前次细胞悬液合并,加血清和冷Hanks 液终止消化,1000rpm 2 分钟离心沉淀,Hanks 液洗 2 次,37 度培养。培养的为胰岛样细胞团(ICCs)。成人胰腺消化、胰岛分离方法 成人胰岛分离(29、24、21、11%)是早年用于成人胰岛分离的方法,国外有很多文献报道,Roche 的 Liberase HI 的说明书也介绍用 1.100、1.080、1.060、1.040 分离成人胰岛,其所述的比重接近上述的百分比浓度,由于现在的成人胰岛分离已采用 COBE 2991 细胞淘洗机,故大多用连续密度梯度分离。尸体胰腺原位灌洗后置 UW 液中,4保存运输。到实验室后在 4 Euro-Collins液中清除非胰组织,从胰管内插入穿刺针,丝线缝扎后用注射器灌注 Liberase酶溶液(1.5 mg/ml)。胰腺充分膨胀后将胰腺切片,置消化罐中并放入数颗玻璃珠,加 500m 孔径的不锈钢丝网,旋紧罐盖。开启蠕动泵将剩余的 Liberase酶溶液泵入罐内,控制罐内温度 37,手动振摇消化罐循环消化,于 10 分钟后开始取样镜检,待大部分胰岛分离后用冷的含 10%胎牛血清(FBS)的 RPMI 1640培养液降温稀释终止消化。收集消化物用 10%FBS 1640 离心洗涤,将消化物混悬于 150 ml UW 液中,4冰浴 30 分钟。加载 1.100Ficoll 到 COBE 2991 细胞掏洗机,从 COBE 排除空气,启动 COBE 旋 7 转 2 400 rpm,分别加 1.100 和 1.077 的 Ficoll 到梯度形成仪,将混合形成的连续梯度液泵入 COBE,再泵入含组织 UW 液,最后泵入 Hanks 液,让 COBE 在 2 400 rpm 转 5 分钟后分管收集纯化后的组织,镜检各管,将含有胰岛的各管组织合并,用 10%FBS 1640 离心洗涤两次,取样做胰岛鉴定和计数。人胎胰岛冷冻保存方法 冻存:人胎胰岛加含 10DMSO、20%FBS 的 1640 培养液,4平衡 20 分钟(使DMSO 进入细胞内)用生物降温仪快速降温至 0,保持 20 分钟(促使形成小的冰晶),以 0.3/分降温至80,直接投入液氮内冻存。复温:从液氮中取出后直接投入 40水浴,并轻轻摇动,待溶解后立即移入 50ml离心管中,于冰浴中加等量 Hanks 液,5 分钟后再加 1 倍的 Hanks 液,如此倍比稀释后 1000 rpm 4 离心 5 分钟,加完全培养液重悬再洗一次后培养。胰岛鉴定方法 DTZ 染色检测胰岛的纯度;AOPI 染色检测胰岛的活率。附图 1.胰岛 DTZ 染色(图 1-4):DTZ 为螯合指示剂,可与铅,铜,锌等螯合,人和动物(豚鼠除外)的胰岛细胞因含锌,DTZ 染色呈猩红色,其它细胞不着色,故 DTZ 对胰岛呈特异性染色。无水乙醇配制:DTZ 10mg 溶于 3ml 无水乙醇(含 50ul 浓 NHOH),加 Hanks液 12ml,此为储存液,临用时用 Hanks 液(PH7.8)1:100 稀释,0.22u 孔径滤膜过滤,与胰岛制备物混合,室温 10 分钟后,镜检。(染色对细胞无明显影响,可继续培养)DMSO 配制:DTZ 10mg 溶于 10ml DMSO,用 Hanks 液(PH7.8)1:1000 稀释,0.22u 孔径滤膜过滤,与胰岛制备物混合,室温 10 分钟后镜检。2.胰岛 AOPI 染色(图 1-4):AO 为浸润性染料(膜通透性),可侵入活细胞与双链 DNA 结合发出绿色荧光、与单链 DNA(变性 DNA

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