2023年观察GDM小鼠模型老年期的糖代谢水平及其胰岛的形态学改变.docx

观察GDM小鼠模型老年期的糖代谢水平及其胰岛的形态学改变 观察GDM小鼠模型老年期的糖代谢水平及其胰岛的形态学改变 本文关键词：胰岛，形态学，小鼠，代谢，老年 观察GDM小鼠模型老年期的糖代谢水平及其胰岛的形态学改变 本文简介：：目的：探讨妊娠期糖尿病〔gestationaldiabetesmellitus,GDM〕小鼠模型老年期糖代谢特点及孕期二甲双胍治疗对GDM小鼠胰岛素抵抗和胰岛功能的远期影响。方法：将小鼠随机分成对照组〔n=6〕、GDM组〔n=6〕、治疗组〔n=6〕，采用高脂饮食诱导建立GDM动物模型，治疗组于 观察GDM小鼠模型老年期的糖代谢水平及其胰岛的形态学改变 本文内容： 　　：目的：探讨妊娠期糖尿病〔gestational diabetes mellitus,GDM〕小鼠模型老年期糖代谢特点及孕期二甲双胍治疗对GDM小鼠胰岛素抵抗和胰岛功能的远期影响。方法：将小鼠随机分成对照组〔n=6〕、GDM组〔n=6〕、治疗组〔n=6〕，采用高脂饮食诱导建立GDM动物模型，治疗组于孕11.5~17.5 d给予二甲双胍治疗。分娩后均转维持饲料，并定期监测其体质量变化。并于分娩9个月后，应用口服葡萄糖耐量试验〔oral glucose tolerance test,OGTT〕及胰岛素耐量试验〔insulin tolerance test,ITT〕检测糖代谢。利用HE染色法观察胰岛的病理学改变。通过免疫组化染色法检测Ki67蛋白在胰腺组织中的表达。结果：分娩2个月后，与对照组相比，GDM及治疗组小鼠体质量增长明显〔F=3.875,P=0.044〕。与对照组相比，GDM组腹腔注射胰岛素后血糖下降缓慢〔P=0.004〕。GDM组胰岛萎缩，数目减少。Ki67在对照组胰岛中呈强阳性表达〔P=0.032〕。结论：GDM小鼠模型分娩后，葡萄糖的调节能力可以根本恢复正常，但是胰岛素抵抗持续存在。进入老年后，胰岛组织萎缩，功能逐渐减退，增殖能力降低。而孕期给予二甲双胍治疗可以增强其老年期的胰岛素敏感性，改善胰岛的病理学改变，但不能改变胰岛组织的增殖能力。 　　 　　关键词：妊娠期糖尿病； 二甲双胍； 胰岛素抵抗； 　　 　　妊娠期糖尿病〔gestational diabetes mellitus,GDM〕是指妊娠期首次发生或者发现的不同程度的糖代谢水平异常，是一种多基因遗传的代谢性疾病。近年来，GDM发病率不断升高，严重危害母婴健康，增加妊娠期高血压疾病、早产、巨大儿、新生儿呼吸窘迫综合征等疾病的发病率[1-3],同时还会对母亲及其子代产生远期危害。有研究发现，患有GDM的母亲，产后发生2型糖尿病[4]、心血管疾病[5]、代谢综合征[6]的风险也明显增加。因此，孕期控制血糖同时改善糖代谢是减少不良结局的关键。二甲双胍〔metformin〕是常用的口服降糖药物[7-8].但因其可通过胎盘屏障，故在GDM中应用的平安性一直存在争议。本研究旨在探讨GDM小鼠模型老年期糖代谢特点及孕期二甲双胍治疗对其胰岛素抵抗和胰岛功能的远期影响。 　　 　　1 材料与方法 　　 　　1.1 材料 　　 　　实验动物：6~8周健康雌性C57小鼠40只，6~8周健康雄性C57小鼠20只，本研究符合作者所在单位实验动物伦理委员会所制定的伦理学标准。动物饲料：高脂饲料〔Research Diets D12451〕，含45%脂肪，20%蛋白质，35%碳水化合物；低脂饲料〔Research Diets AIN-93G〕，含15.8%脂肪，20.3%蛋白质，63.9%碳水化合物。主要试剂：二甲双胍及葡萄糖〔美国Sigma公司〕，胰岛素注射液〔江苏万邦〕，Ki67抗体〔Proteintech〕。主要仪器：血糖仪及试纸〔美国强生〕。 　　 　　1.2 GDM动物模型的建立 　　 　　健康成年的雌鼠随机分为2组，模型组〔n=8〕和正常组〔n=8〕。模型组高脂饲料喂养1周后与雄鼠按2﹕1比例合笼，次日清晨检查阴栓，假设检测到阴栓那么标记为妊娠0.5 d,整个孕期持续高脂饮食。正常组孕前1周及孕期给予低脂饲料，其余同模型组。于孕16.5 d行葡萄糖耐量试验，假设模型组糖代谢明显异常，那么造模成功。 　　 　　1.3 实验分组 　　 　　所有实验小鼠普通饮食适应性喂养2周，随机分为3组：对照组〔n=6〕、GDM组〔n=6〕、治疗组〔n=6〕。GDM及治疗组孕前1周及孕期给予高脂饮食喂养，对照组孕前1周及孕期给予低脂饮食喂养。于孕11.5~17.5 d,治疗组给予300 mg/〔kg×d〕二甲双胍溶液灌胃，GDM及对照组那么给予相同剂量的PBS灌胃。2组孕鼠分娩后均给予普通维持饲料，喂养至12月龄。 　　 　　1.4 检测指标 　　 　　1.4.1 OGTT和ITT 　　 　　检测小鼠12月龄时的口服葡萄糖耐量试验〔oral glucose tolerance test,OGTT〕水平。首先将小鼠禁食6 h,按禁食后的体质量，以2 g/kg的量经口腔灌注20%的葡萄糖溶液，由尾静脉采血，用血糖仪检测灌注前，灌注后30、60、90、120 min的血糖水平，绘制OGTT曲线并计算曲线下面积〔AUC〕。检测小鼠12月龄时的胰岛素耐量试验〔insulin tolerance test,ITT〕水平。首先将小鼠禁食6 h,按禁食后的体质量，以2.5 U/kg的量经腹腔注射0.25 U/mL的胰岛素溶液，由尾静脉采血，用血糖仪检测注射前、注射后15、30、60、120 min的血糖水平，绘制ITT曲线并计算AUC. 　　 　　1.4.2 胰腺组织HE染色 　　 　　所有12月龄的小鼠禁食6 h后，戊巴比妥钠溶液腹腔麻醉后，快速别离胰腺组织。4%多聚甲醛溶液固定，常规石蜡包埋切片，苏木精-伊红染色后于光镜下观察胰腺组织的形态学变化。 　　 　　1.4.3 免疫组化法检测胰腺组织Ki67蛋白的表达 　　 　　胰腺组织4%多聚甲醛溶液固定，常规石蜡包埋切片，免疫组化法检测Ki67的表达。脱蜡；微波修复法抗原修复，PBS冲洗，5 min1次；3%过氧化氢溶液孵育10 min,PBS冲洗，3 min3次；非免疫山羊血清室温封闭30 min;滴加一抗，4 ℃过夜，PBS冲洗，10 min3次；滴加二抗，室温孵育1 h,PBS冲洗，10 min3次；DAB显色；苏木精复染；脱水封片。显微镜下采集图片，利用Image-Pro Plus 6.0软件计算平均光密度。 　　 　　1.5 统计学处理 　　 　　采用SPSS 23.0软件进行统计学分析，结果以均数±标准差的形式表示。采用独立样本的t检验进行2组间比拟；采用单因素方差分析进行多组比拟，事后进行LSD检验分析2组间的差异；模型建立中的OGTT结果先进行重复测量方差分析，后应用独立样本t检验分析同一时间点2组间的血糖差异及曲线下面积差异；检验水准α=0.05. 　　 　　2 结 果 　　 　　2.1 高脂饮食诱导妊娠期糖尿病小鼠模型建立 　　 　　为了评价建模效果，我们对妊娠期16.5 d的OGTT结果进行了重复测量方差分析，结果显示分组主效应〔F=107.379,P=0.000〕，时间主效应〔F=1187.974,P=0.000〕及两者交互效应〔F=40.621,P=0.000〕均具有统计学差异。说明血糖值有随时间因素变化的趋势，且时间对血糖的影响会随着分组的不同而变化。接下来我们对同一时间点不同分组间的血糖值进行了比拟〔表1〕。与正常组相比，模型组空腹血糖偏高〔t=2.485,P=0.026〕；给予葡萄糖灌胃后，模型组血糖下降缓慢，与正常组相比，其灌注后30 min〔t=18.756,P=0.000〕、60 min〔t=7.766,P=0.000〕、90 min〔t=3.452,P=0.004〕的血糖水平明显升高；通过AUC分析也发现，模型组较正常组有升高的趋势〔t=10.926,P=0.000〕。综上所述，模型组OGTT结果明显异常，调节葡萄糖的能力下降，高脂饮食诱导妊娠期糖尿病小鼠模型建模成功。 　　 　　2.2 分娩后小鼠体质量增长趋势 　　 　　3组小鼠分娩后均转普通饲料喂养。在分娩2个月后，3组小鼠体质量具有明显统计学差异〔F=3.875,P=0.044〕。与对照组相比，GDM组〔P=0.028〕及治疗组〔P=0.031〕的小鼠体质量持续升高。分娩5个月后，虽然治疗组的体质量增长速度较GDM组有所减慢，但2组间仍无明显统计学差异〔P=0.097〕。 　　 　　2.3 GDM小鼠分娩后对葡萄糖的调节能力根本恢复正常但出现胰岛素抵抗 　　 　　OGTT结果及曲线下面积〔AUC〕分析显示，葡萄糖灌注前，3组小鼠血糖值无明显统计学差异〔F=2.009,P=0.169〕，灌注后2 h GDM组较对照组血糖值高〔P=0.002〕，但3组的AUC并无明显统计学差异〔F=1.624,P=0.230〕。说明与对照组相比，GDM组调节葡萄糖的能力无明显差异〔图2A、B〕。ITT结果及AUC分析显示，与对照组相比，GDM组腹腔注射胰岛素后30 min〔P=0.000〕、60 min〔P=0.008〕血糖下降缓慢，其AUC明显升高〔P=0.004〕，说明GDM组老年小鼠存在明显胰岛素抵抗。与GDM组相比，治疗组小鼠注射胰岛素后30 min〔P=0.009〕、60 min〔P=0.026〕血糖降低较快，AUC有降低的趋势，说明孕期二甲双胍治疗存在提高胰岛素敏感性的作用〔图2C、D〕。 　　 　　2.4 进入老年期，GDM小鼠胰岛出现病理学改变，孕期二甲双胍治疗可以改善 　　 　　3组小鼠的胰腺组织经HE染色后光镜下观察。对照组小鼠胰岛数量较多，面积大小不等，形态规那么边界清楚。GDM组小鼠胰岛数量明显减少，胰岛面积萎缩，形态不一。治疗组小鼠胰岛数量较高脂组增多，胰岛面积与正常组类似，形态较规那么，边界欠清〔图3〕。 　　 　　 　　2.5 Ki67在胰腺组织的表达 　　 　　通过免疫组化染色，可以看到细胞增殖标记物Ki67主要定位于胰岛的细胞核〔图4〕。对照组胰岛部着色较深，而GDM组及治疗组染色较浅，其平均光密度分别为对照组0.149±0.109、GDM组0.006±0.003、治疗组0.016±0.0030.3组之间比拟虽然无明显统计学差异〔F=4.791,P=0.057〕，但两两比拟发现，对照组较GDM组〔P=0.032〕和治疗组〔P=0.042〕Ki67的表达量升高。 　　 　　 　　3 讨 论 　　 　　GDM是一种以代谢异常为主要表现的妊娠期并发症，其发病机制复杂，主要涉及2个关键环节，即胰岛素抵抗、胰岛β细胞分泌相对缺乏。妊娠中后期生理性血容量增加，胰岛素浓度降低，同时孕期增加的雌孕激素及胎盘激素具有拮抗胰岛素的作用，外周组织对胰岛素的敏感性下降，胰岛素需求增大。如果此时胰岛β细胞分泌的胰岛素不能代偿胰岛素抵抗的局部，糖代谢就会发生紊乱，进而开展为GDM. 　　 　　虽然大多数患有GDM的女性在产后血糖值可以恢复正常水平。但是大量的研究[4-6,9]发现，这局部女性产后发生2型糖尿病、心血管疾病、代谢综合征的风险明显增加。说明虽然血糖值恢复了正常，但其体内的代谢紊乱并未完全消除。国内外的一局部临床研究[10-12]发现，GDM的产妇在分娩后依然表现出慢性胰岛素抵抗的状态。本研究也发现，GDM组的小鼠在分娩后体质量增长迅速；进入老年期后，虽然葡萄糖耐量实验表现正常，但其胰岛已经发生了萎缩，数量减少等病理学改变，且胰岛素敏感性下降，出现胰岛素抵抗。1995年Stern[13]提出的“共同土壤学说〞认为胰岛素抵抗是糖尿病和心血管疾病的共同危险因素，同时，也有研究证明了代谢综合征、肥胖等代谢性疾病与胰岛素抵抗的相关性[13-15].因此，产后持续的胰岛素抵抗状态很可能是GDM远期危害的主要原因之一。 　　 　　二甲双胍是常用的口服降糖药，其降血糖的机制主要包括[7]减少肠道对葡萄糖的吸收、抑制肝脏的糖异生及提高外周组织对葡萄糖的敏感性。同时