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2023
饲料
发酵
工艺
益生菌
增殖
大肠杆菌
数量
变化
影响
饲料发酵工艺对益生菌增殖及大肠杆菌数量变化的影响
摘 要:以植物乳杆菌和大肠杆菌 E.colik88 为指示菌株,研究了饲料的液态转固态发酵与固态发酵两种工艺在 20 ℃与 30 ℃两种温度下的 pH 值变化及菌数的动态变化。结果说明:①30 ℃温度下,物料的酸度变化〔pH 值〕比 20 ℃温度时下降的速度快、幅度大;②在固态发酵过程中,液态转固态发酵的起始 pH 值低于固态发酵〔P<0.05〕,但液态转固态发酵和固态发酵在发酵过程中 pH 值差异不显著(P>0.05);③在 30 ℃的发酵温度下,乳酸细菌数呈先增值后下降趋势,但液态转固态发酵与固态发酵之间差异不显著(P>0.05);④在液态转固态发酵工艺下,大肠杆菌 E.colik88 菌数呈直线下降趋势,而在固态发酵工艺下,大肠杆菌 E.colik88 菌数呈先升后降,证实液态转固态工艺对原料中大肠杆菌直接产生抑菌作用。
关键词:益生菌;发酵工艺;乳酸菌数;抑菌特性
随着饲料中抗生素类生长促进剂在欧盟的全面
禁用,饲料微生物发酵技术在动物生产中受到高度重
视,欧盟已实现广泛应用。饲喂微生物发酵饲料有提
高动物生长性能和改善肠道健康的作用〔Scholten 等,
1999;Canibe 等 2023〕,荷兰至少有 50%的猪在饲喂
发酵饲料,丹麦有 30%以上的母猪饲喂发酵饲料,母
猪泌乳期的使用更达 70%以上。另外,法国、瑞典、西
班牙也陆续开始使用微生物发酵饲料。饲料发酵目前
主要采用液态发酵和固态发酵两种工艺,液态发酵
〔Submerged Fermentation,SmF〕具有周期短、易控制、
微生物的繁殖重复性强等优点,但需要配套昂贵的系
统设备,难以被群众所接受;固态发酵〔Solid State
Fermentation,SSF〕具有培养基简单,基料来源广泛;投
资少,能耗低,操作方便等优点,但劳动强度大,难以
与现实规模化养殖生产所需的系列化日粮配合加工
结合。为此,本课题设计饲料液态发酵转固态发酵新
工艺并展开了系列研究。试验以植物乳杆菌〔Lacto-
bacillus plantarum〕 和致病性大肠杆菌 E.colik88 为指
示菌株,研究在液态转固态发酵饲料中目标益生菌和
指示菌的动态变化情况,为建立适合我国养殖生产条
件的生物发酵饲料新工艺提供科学依据。
1 材料与方法
1.1 试验材料
1.1.1 菌株来源
植物乳杆菌由湖北省农业科学院畜牧兽医研究
所别离、鉴定并保存;大肠杆菌 E.colik88 购于中国兽
医药品监察所。
1.1.2 培养基选择及菌株培养
参照何涛等介绍的方法,植物乳杆菌采用 MRS
培养基,大肠杆菌 E.colik88 采用伊红美兰培养基培养。
1.1.3 主要仪器设备
超净工作台〔苏州安泰 SW-CJ-1CU 型〕、酸度计
(上海理达 PHS-25C 型)、高压蒸汽灭菌锅〔上海申安
ZDX-35BI 型〕、恒温培养箱 〔黄石恒丰 SP-01 型〕、
微型发酵瓶(罐头瓶)。
1.1.4 发酵基料设计原那么
以生长后期仔猪配合饲料为发酵的根底原料,即
不含预混料的配合饲料〔配方见表 1〕。在此根底上,
制备如下三种发酵基料,①固态发酵基料:为不含微
量元素、维生素、矿物质的配合饲料;②液态发酵基
料:玉米、豆粕按质量分数 1: 3 混合均匀;③液态转
固态发酵基料:为固态发酵基料中减去液态发酵基料
的局部。
饲料工业·2023 年第 32 卷第 5 期
试 验 研 究
30表 1 固态发酵基料配方
原料名称
玉米
豆粕
鱼粉
麸皮
膨化大豆
比例〔%〕
66
18
3
5
8
1.2 试验方法
1.2.1 试验设计与方案
采用 2 因子试验设计。研究了2 种发酵温度〔20 ℃,
T1;30 ℃,T2〕下,不同发酵工艺〔液态转固态发酵和固
态发酵〕对 pH 值及菌落数的影响,设计方案见表 2。
表 2 设计方案
发酵温度
T1〔20℃〕
T2〔30℃〕
发酵工艺
液态转固态发酵
固态发酵
液态转固态发酵
固态发酵
1.2.2 试验操作方法
1.2.2.1 液态转固态发酵工艺操作方法
第一阶段〔液态发酵〕:称取 20 g 液态发酵基料
于微型发酵瓶中,以料水比 1: 3.5 参加 70 g 水,按
10
6
cfu/g 物料接入植物乳杆菌,在 25 ℃的恒温条件下
静置培养 48 h。
第二阶段〔固态发酵〕:直接在液态发酵料中参加
80 g 的固态配合料,搅拌均匀,使终水分在 40%左右。
并按每 10
6
cfu/g 物料接种 E.colik88,密封置恒温培养
箱中培养。
1.2.2.2 固态发酵工艺操作方法
与液态转固态发酵工艺的第二个阶段同时进行,
具体操作如下:称取 20 g 液态发酵基料和 80 g 的固
态配合料于微型发酵瓶中,参加一定质量的水,使终
水分在 40%左右,按 10
6
cfu/g 物料分别接种植物乳杆
菌和 E.colik88,搅拌均匀,密封置恒温培养箱中培养。
1.2.3 指标测定
分别于固态发酵开始后第 0、24、48、72、120、168 h
无菌取样,进行 pH 值和微生物的测定。
pH 值测定:取鲜样 10 g,用 100 ml 蒸馏水浸提 1~
2 min 后,经纱布过滤,水浸液当即用酸度计测定 pH值。
微生物测定采用 10 倍稀释法,植物乳杆菌测定
应用 MRS 琼脂培养基,37 ℃培养 36 h,大肠杆菌 E.
colik88 测定采用 EMB 培养平板,37 ℃培养 24 h。
1.3 数据处理
微生物及 pH 值数据采用 SAS6.12 的 t-test 过程
进行两组均数的差异显著性检验。
2 结果与分析
2.1 发酵过程中 pH 值的动态变化
2.1.1 不同发酵工艺对 pH 值的影响〔见表 3〕
在发酵过程中,液态转固态发酵起始〔0 h〕pH 值
明显优于固态发酵,差异显著〔P<0.05〕。在随后的发
酵时间里,2 个发酵温度下,液态转固态发酵和固态
发酵 pH 值差异都不显著(P>0.05)。这主要是因为液
态转固态发酵工艺中接种的益生菌株植物乳杆菌
发酵过程中产生的乳酸、乙酸等有机酸成分,在液
态转固态发酵时直接降低了饲料的 pH 值。因而
随着发酵时间的延长,pH 值趋向一致,所以差异不
显著。
2.1.2 不同发酵温度对 pH 值的影响〔见图 1〕
7
6
5
4
3
2
1
0
p
H
值
0 2448 72 120238
液态转固态发酵 T1
液态转固态发酵 T2
固态发酵 T1
固态发酵 T2
时间〔h〕
图 1 不同发酵温度对 pH 值的影响
168
4.05±0.05
a
3.96±0.04
a
3.94±0.03
a
4.01±0.02
a
表 3 不同发酵处理对 pH 值的影响
0
5.82±0.02
a
6.40±0.03
b
5.82±0.02
a
6.40±0.03
b
24
4.54±0.10
a
4.49±0.01
a
4.22±0.04
a
4.19±0.01
a
48
4.28±0.06
a
4.29±0.05
a
3.97±0.03
a
3.96±0.05
a
72
4.15±0.02
a
4.15±0.02
a
3.86±0.01
a
3.87±0.02
a
120
3.95±0.01
a
3.94±0.06
a
3.90±0.04
a
3.86±0.04
a
T1
液态转固态发酵
固态发酵
T2
液态转固态发酵
固态发酵
项目
培养时间〔h〕
注:同一温度下同列标注字母不同者差异显著〔P<0.05〕。 下表同。
杨雪海等:饲料发酵工艺对益生菌增殖及大肠杆菌数量变化的影响
试 验 研 究
31从图 1 可见,液态转固态发酵和固态发酵在 T1、
T2 两个发酵温度下随发酵时间的延续均表现出逐渐
下降的趋势,在 120 h 时降到最低,随后出现轻微的
上升。在 24、48、72 h 三个时间点两种发酵工艺的pH 值
T2 明显低于 T1〔P<0.05〕,在随后的时间未表现出明
显的差异(P>0.05)。
2.2 发酵过程中植物乳杆菌菌数变化
2.2.1 不同发酵工艺对植物乳杆菌菌数的影响〔见表 4〕
从表 4 可知,发酵温度为 20 ℃〔T1〕时,48 h 以前
2 种发酵工艺的植物乳杆菌菌数差异显著 〔P<0.05〕,
72 h 以后的各点差异不显著;而发酵温度为 30 ℃
〔T2〕时,24 h 以前 2 种发酵工艺的植物乳杆菌菌数差
异显著〔P<0.05〕,24 h 以后的各点差异不显著。
2.2.2 不同发酵温度对植物乳杆菌菌数的影响〔见图 2〕
12
10
8
6
4
2
0
菌
数
(
l
o
g
c
f
u
/
g
)
0 2448 72 120238
液态转固态发酵 T1
液态转固态发酵 T2
固态发酵 T1
固态发酵 T2
时间〔h〕
图 2 不同发酵温度对植物乳杆菌菌数的影响
从图 2 可知,在 72 h 以内,液态转固态发酵和固
态发酵植物乳杆菌数菌数在 T1、T2 发酵温度下未表
现明显差异(P>0.05)。但在随后的发酵时间里,表现出
显著的差异〔P<0.05〕。T1 发酵温度下的植物乳杆菌菌
数优于 T2 发酵温度。
2.3 发酵过程中 E.colik88 的菌数变化
2.3.1 不同发酵工艺对 E.colik88 菌数的影响〔见表 5〕
由表 5 可见,在 T1 发酵温度下,液态转固态发酵
工艺和固态发酵工艺大肠杆菌 E.colik88 菌数表现出
较大的差异。液态转固态发酵大肠杆菌 E.colik88 呈
直线下降趋势,在 72 h 降到检测限以下,固态发酵那么
表现为先上升后下降趋势,固态发酵在 120 h 才降为
检测限以下。在 T2 发酵温度下,2 种发酵工艺大肠杆
菌 E.colik88 菌数在发酵 24 h 时差异显著〔P<0.05),随
后均降为检测限以下。
2.3.2 不同发酵温度对 E.colik88 菌数的影响〔见图3〕
从图 3 可见,液态转固态发酵大肠杆菌 E.coli
k88 的菌数在 T1、T2 发酵温度下,呈直线下降趋势,
在 T1 温度下 72 h 降到检测限以下,而在 T2 温度下
48 h 就降到了检测限以下。固态发酵 E.colik88 菌数
那么表现为先上升后下降,在 T1 温度下,48 h 到达最高
值,随后出现下降,120 h 降到检测限以下,在 T2 温度
168
9.59±0.17
a
9.54±0.20
a
8.91±0.12
a
8.93±0.09
a
表 4 不同发酵处理对植物乳杆菌菌数的影响〔logcfu/g〕
0
8.20±0.20
a
6.15±0.15
b
8.20±0.20
a
6.15±0.15
b
24
9.53±0.10
a
9.41±0.11
b
9.63±0.23
a
9.49±0.14
b
48
9.62±0.08
a
9.47±0.09
b
9.59±0.09
a
9.57±0.21
a
72
9.63±0.23
a
9.54±0.14
a
9.60±0.18
a
9.53±0.05
a
120
9.56±0.14
a
9.56±0.17
a
8.86±0.08
a
8.93±0.