SN∕T 5442-2022 出口植物源食品中丙硫菌唑及其代谢物残留量的测定 液相色谱-质谱_质谱法.pdf

I C S6 7.0 5 0C C SX 0 4中华人民共和国出入境检验检疫行业标准S N/T5 4 4 22 0 2 2 出口植物源食品中丙硫菌唑及其代谢物残留量的测定 液相色谱-质谱/质谱法D e t e r m i n a t i o n o f p r o t h i o c o n a z o l e a n d i t s m e t a b o l i t e r e s i d u e s i n f o o d s t u f f s o f p l a n t o r i g i n f o r e x p o r tL C-M S/M S m e t h o d2 0 2 2-0 3-1 4发布2 0 2 2-1 0-0 1实施中华人民共和国海关总署发 布以正式出版文本为准以正式出版文本为准前 言 本文件按照G B/T 1.12 0 2 0 标准化工作导则 第1部分:标准化文件的结构和起草规则、G B/T 2 0 0 0 1.42 0 1 5 标准编写规则 第4部分:试验方法标准 和S N/T 0 0 0 12 0 1 6 出口食品、化妆品理化测定方法标准编写的基本规定 的规定起草。请注意文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任。本文件由中华人民共和国海关总署提出并归口。本文件起草单位:中华人民共和国合肥海关技术中心、中华人民共和国银川海关技术中心、中华人民共和国杭州海关技术中心、中国民航大学。本文件主要起草人:宋伟、韩芳、王芳焕、陈达、楼成杰、吕亚宁、刘宇欣、周典兵、丁磊、许曼曼、王钰、贾学颖、侯建波、郑平。S N/T5 4 4 22 0 2 2以正式出版文本为准以正式出版文本为准出口植物源食品中丙硫菌唑及其代谢物残留量的测定 液相色谱-质谱/质谱法1 范围本文件规定了出口植物源食品中丙硫菌唑及其代谢物脱硫丙硫菌唑残留量的液相色谱-质谱/质谱检测方法。本文件适用于小麦、大麦、燕麦、黑麦、玉米、赤豆、油菜籽、大豆、花生仁、葵花籽、甜菜、生菜、番茄、黄瓜、马铃薯、梨、葡萄、草莓等植物源食品中丙硫菌唑及其代谢物脱硫丙硫菌唑残留量的定性鉴别及定量测定。2 规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。G B 2 7 6 3 食品安全国家标准 食品中农药最大残留限量G B/T 6 6 8 2 分析实验室用水规格和试验方法3 术语和定义本文件没有需要界定的术语和定义。4 方法原理 样品中丙硫菌唑及其代谢物脱硫丙硫菌唑残留采用含0.1%甲酸的乙腈溶液提取,基质分散固相萃取净化后,采用液相色谱-质谱/质谱测定,外标法定量。5 试剂和材料 除非另有说明,所用试剂均为分析纯,水为G B/T 6 6 8 2规定的一级水。5.1 乙腈:色谱纯。5.2 乙酸:色谱纯。5.3 甲酸:色谱纯。5.4 乙酸铵:色谱纯。5.5 正己烷:色谱纯。5.6 抗坏血酸。5.7 氯化钠。5.8 无水硫酸镁:经6 5 0 灼烧4 h,储于干燥器中,冷却后备用。5.9 1%甲酸乙腈溶液:取1.0 m L甲酸(5.3)至1 0 0 m L容量瓶中,并用乙腈(5.1)定容至刻度,充分混1S N/T5 4 4 22 0 2 2以正式出版文本为准匀,备用。5.1 0 1.5%抗坏血酸溶液:取1 5 g抗坏血酸(5.6),用水稀释并定容至1 0 0 0 m L。5.1 1 2 0%乙腈溶液:取2 0 m L乙腈(5.1),用水稀释并定容至1 0 0 m L。5.1 2 丙硫菌唑标准物质(p r o t h i o c o n a z o l e):C1 4H1 5C l2N3O S,C A S号1 7 8 9 2 8-7 0-6;脱硫丙硫菌唑标准物质(p r o t h i o c o n a z o l e-d e s t h i o):C1 4H1 5C l2N3O,C A S NO.1 2 0 9 8 3-6 4-4。纯度均大于等于9 8%。5.1 3 标准储备溶液的配制:准确称取适量丙硫菌唑、脱硫丙硫菌唑标准品(精确至0.1 m g),分别用乙腈溶解,配制成浓度为1.0 m g/m L标准贮备溶液,0 4 下避光保存,可使用6个月。5.1 4 中间混合标准溶液:分别吸取1.0 0 m L丙硫菌唑标准储备液及1.0 0 m L脱硫丙硫菌唑标准储备液(5.1 3),移入1 0 0 m L棕色容量瓶,用乙腈定容,该溶液浓度为1 0 g/m L。0 4 冷藏避光保存,可使用3个月。5.1 5 标准工作溶液:根据需要,吸取适量标准中间溶液(5.1 4),配制成1.2 5 g/L、2.5 g/L、5 g/L、2 5 g/L、5 0 g/L的混合标准溶液,使用前配制。5.1 6 十八烷基键合硅胶(C1 8),5 0 m。5.1 7 N-丙基乙二胺(P S A),4 0 m 6 0 m。5.1 8 滤膜:0.2 2 m,有机系。6 仪器和设备6.1 液相色谱-质谱/质谱仪:配电喷雾离子源(E S I)。6.2 分析天平:感量为0.0 1 g和0.0 0 0 1 g。6.3 粉碎机。6.4 组织捣碎机。6.6 样品筛:孔径为2 mm。6.6 均质器:1 5 0 0 0 r/m i n。6.7 涡旋振荡器。6.8 高速冷冻离心机:转速不低于1 0 0 0 0 r/m i n。7 分析步骤7.1 样品制备与保存7.1.1 小麦、大麦、燕麦、黑麦、玉米、赤豆、油菜籽、大豆、花生仁、葵花籽取出有代表性样品5 0 0 g,用粉碎机全部粉碎后充分混匀,均匀分成2份作为试样,分装入洁净的容器内,密封并做好标记,于-1 8 以下温度避光保存。7.1.2 甜菜、生菜、番茄、黄瓜、葡萄、草莓、梨、马铃薯按G B 2 7 6 3的规定取样执行。对于个体较小的样品,取样后全部处理;对于个体较大的基本均匀样品,可在对称轴或对称面上分割或切成小块后处理;对于细长、扁平或组分含量在各部分有差异的样品,可在不同部位切取小片或截成小段后处理;取后的样品将其切碎,充分混匀,用四分法取样或直接放入组织捣碎机中捣碎成匀浆,均匀分成2份作为试样,装入洁净容器内,密封并做好标记,于-1 8 以下温度保存。2S N/T5 4 4 22 0 2 2以正式出版文本为准7.2 提取7.2.1 小麦、大麦、燕麦、黑麦、大豆、玉米、赤豆、马铃薯称取约5 g试样(精确至0.0 1 g),置于5 0 m L具塞棕色离心管中,快速加入1 0 m L抗坏血酸溶液(5.1 0),涡旋1 m i n使试样完全润湿,然后加入1 0 m L 1%甲酸乙腈溶液(5.9),涡旋振荡后超声提取1 0 m i n;向离心管中加入5 g氯化钠(5.7),涡旋振荡1 m i n;8 0 0 0 r/m i n 4离心5 m i n,取1.0 m L上层清液待净化。7.2.2 甜菜、生菜、番茄、黄瓜、葡萄、梨、草莓称取约5 g试样(精确至0.0 1 g),置于5 0 m L具塞棕色离心管中,快速加入1 0 m L抗坏血酸溶液(5.1 0),涡旋1 m i n;加入1 0 m L 1%甲酸乙腈溶液(5.9)涡旋振荡提取2 m i n,之后向离心管中加入5 g氯化钠(5.7),涡旋振荡1 m i n;8 0 0 0 r/m i n 4 离心5 m i n,取1.0 m L上层清液待净化。7.2.3 油菜籽、花生仁、葵花籽称取约5 g试样(精确至0.0 1 g),置于5 0 m L具塞棕色离心管中,快速加入1 0 m L抗坏血酸溶液(5.1 0),涡旋1 m i n使试样完全润湿,然后加入1 0 m L 1%甲酸乙腈溶液(5.9),涡旋振荡后超声提取1 0 m i n;向离心管中加入5 g氯化钠(5.7),涡旋振荡1 m i n;8 0 0 0 r/m i n 4 离心5 m i n,取2.0 m L上层清液,之后加入乙腈饱和的正己烷溶液除油数次,取1.0 m L下层乙睛溶液待净化。7.3 净化7.3.1 小麦、大麦、燕麦、黑麦、玉米、赤豆、大豆、甜菜、生菜、番茄、黄瓜、葡萄、草莓、马铃薯、梨将1.0 m L上清液放入装有5 0 m g C1 8(5.1 6)、5 0 m g P S A(5.1 7)和1 5 0 m g无水硫酸镁(5.8)的2 m L离心管中,涡旋3 0 s,1 0 0 0 0 r/m i n 4 离心5 m i n;取0.5 m L上清液,加入0.5 m L 2 0%乙腈溶液(5.1 1)稀释后过有机系滤膜至棕色样品瓶,供H P L C-M S/M S检测。7.3.2 油菜籽、花生仁、葵花籽将1.0 m L上清液放入装有1 5 0 m g C1 8(5.1 6)、5 0 m g P S A(5.1 7)和1 5 0 m g无水硫酸镁(5.8)的2 m L离心管中;涡旋3 0 s,1 0 0 0 0 r/m i n 4 离心5 m i n;取0.5 m L上清液,加入0.5 m L 2 0%乙腈溶液(5.1 1)稀释后过有机系滤膜(如有浑浊,可1 0 0 0 0 r/m i n 4 离心5 m i n,再取上清液过有机系滤膜)至棕色样品瓶,供H P L C-M S/M S检测。7.4 测定7.4.1 液相色谱参考条件7.4.1.1 液相色谱柱:C1 8色谱柱,5 0 mm2.0 mm(内径),1.8 m,或性能相当者。7.4.1.2 流动相:A为纯水,B为乙腈。7.4.1.3 柱温:3 5 1。7.4.1.4 进样量:1 0.0 L。7.4.1.5 流速:0.4 m L/m i n。7.4.1.6 流动相及梯度洗脱条件:见表1。3S N/T5 4 4 22 0 2 2以正式出版文本为准表1 流动相及梯度洗脱条件(VA+VB)时间/m i n流动相VA/%流动相VB/%0.0 08 02 00.5 08 02 02.0 04 06 04.0 04 06 04.5 01 09 06.5 01 09 07.0 08 02 01 1.0 08 02 07.4.2 质谱参考条件7.4.2.1 离子源:电喷雾离子源(E S I)。7.4.2.2 扫描方式:正负切换模式。7.4.2.3 检测方式:多反应监测模式(MRM)。7.4.2.4 雾化气、干燥气、鞘气、碰撞气均为高纯氮气及其他合适气体;使用前应调节各气体流量以使质谱灵敏度达到检测要求。喷雾电压、碎裂电压、碰撞能等电压值应优化至最佳灵敏度,参考质谱参数参见附录A。7.4.3 定性测定按照液相色谱-质谱/质谱条件测定样品和标准工作溶液,如果检测的质量色谱峰保留时间与标准品保留时间相差不超过2.5%,定性离子对的相对丰度(是用相对于最强离子丰度的强度百分比表示)与浓度相当的标准工作溶液的相对丰度一致,相对丰度允许偏差不超过表2规定的范围,则可判断样品中存在对应的被测物。表2 定性确证时相对离子丰度的最大允许偏差相对丰度/%5 02 05 01 02 01 0允许的相对偏差/%2 02 53 05 07.4.4 定量测定在相同实验条件下,将系列标准工作溶液(5.1 5)按浓度由低到高进样检测,以定量子离子峰面积-浓度作图,得到标准曲线。待测样液中丙硫菌唑及其代谢物的响应值应在标准曲线线性范围内,超过线性范围则应稀释至相应范围内再进样分析。采用外标法定量。在上述色谱条件下,丙硫菌唑及其代谢物脱硫丙硫菌唑的多反应监测(MRM)色谱图参见附录B,出峰时间分别为2.9 m i n和3.2 m i n。7.4.5 空白试验除不加试样外,按上述测定步骤进行。4S N/T5 4 4 22 0 2 2以正式出版文本为准7.4.6 结果计算与表述试样中待测物的含量由色谱数据处理软件或按式(1)计算获得,计算结果需扣除空白值。X=cV1 0 0 0m1 0 0 0(1)式中:X 试样中被测物残留量,单位为毫克每千克(m g/k g)