SZDBZ 315-2018 基于基因条形码的鱼类物种鉴定技术要求.pdf

SZDB/Z 3152018 深 圳 市 标 准 化 指 导 性 技 术 文 件 基于基因条形码的鱼类物种鉴定技术要求 Technical specification for identification of fish species based on DNA barcoding 2018-08-02 发布 深圳市市场和质量监督管理委员会 发 布 2018-09-01 实施ICS 07.080 B 50 SZDB/Z SZDB/Z 3152018 I 目 次 目 次 前 言.II1 范围.12 规范性引用文件.13 术语与定义.14 缩略语.25 原理.26 仪器与试剂.27 取样.38 实验步骤.39 结果判断.5附录 A（规范性附录）试剂配制.6附录 B（规范性附录）序列的有效性判定.7附录 C（资料性附录）基因条形码在 BOLD 系统中物种鉴定流程示意图.9附录 D（资料性附录）基因条形码在 NCBI 系统中物种鉴定流程示意图.11 SZDB/Z 3152018 II 前 言 本文件根据GB/T 1.1-2009给出的规则起草。本文件由深圳市检验检疫科学研究院提出。本文件由中华人民共和国深圳海关归口。本文件起草单位：深圳市检验检疫科学研究院、深圳出入境检验检疫局动植物检验检疫技术中心、深圳出入境检验检疫局食品检验检疫技术中心、深圳华大海洋研究院、镇江华大检测有限公司。本文件主要起草人：郑晓聪、刘荭、石琼、王敏、何俊强、黄玉、阮周曦、于力、王津津、贾鹏、刘莹、温志清、史秀杰、兰文升、秦智锋。SZDB/Z 3152018 1 基于基因条形码的鱼类物种鉴定技术要求 1 范围 本文件规定了鱼类基因条形码鉴定中的样品处理、基因扩增、序列分析、比对鉴定及结果判定等操作程序和规范。本文件适用于对自然环境种化产生的野生型鱼类或其残存的组织进行物种鉴定,不适用于杂交品种。2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 FDA SOP for Generating DNA Barcodes Suitable for Species Identification of an Unknown Fish Tissue Sample 3 术语与定义 下列术语与定义适合于本文件。3.1 基因条形码（DNA barcoding）是指可用于物种鉴定的具有生物物种序列特征的DNA片段，本文件中指鱼类线粒体基因组中的COI基因片段。3.2 基因条形码鉴定技术（DNA barcoding identification technique）一种利用基因片段进行生物物种鉴定和系统进化关系研究的技术，建立在基因扩增和序列比对的基础之上，它具有不受物种发育状态、雌雄性个体及形态特征完整性与否的限制、减少对分类专家的依赖、不受主观因素影响、准确率高、借助互联网可以实现数据共享等特点。3.3 空白对照（Blank control）从基因组DNA提取步骤开始至PCR扩增和PCR产物检测整个过程，没有加入任何鱼源性成分的空白的灭菌洁净离心管，与其他受试的样品平行进行操作以观察实验是否处于正常状态。空白对照没有PCR产物条带产生。3.4 阳性对照（Positive control）SZDB/Z 3152018 2 在PCR扩增过程中，与受试样品平行进行的对照反应，以在正常反应情况下一定能产生PCR产物的DNA为反应模板，用于观察整个反应体系和反应过程是否正常，阳性对照应有PCR产物带产生。3.5 阴性对照（Negative control）非鱼类样品的其他物种样品，与受试样品平行进行的对照反应，用于观察整个反应体系是否正常，确认没有受到污染，阴性对照没有PCR产物条带产生。3.6 序列相似度（Similarity of the sequences）反映序列间相似程度的数值，一般以百分数表示。3.7 FASTA格式(FASTA format)生物信息学术语，又称Pearson格式，是一种用文本表示核苷酸序列或者氨基酸序列的格式。核苷酸或者氨基酸碱基用单个字母表示，序列的第一行一般用“”起始，随后可以添加序列名或者注释，第二行为序列本身，只允许使用既定的核苷酸或者氨基酸编码符号，如核苷酸使用ATCG表示，序列中不能出现回车等字符。示例：GTGTGTGGGTATGATTCTAAACTGACAAATCGCGCCTATTTATACTTTTTCCCCGGGGTTTAAATTCCTTGGCCCCCATGTGGTTTCTTTAATTTTAGATTGTGGAACCCATTTTCTTAATCCGTAATCG 4 缩略语 下列缩略语适用于本文件。BOLD：生物条形码数据系统（barcoding of life data system）NCBI：美国生物技术信息中心（National center for biotechnology information）5 原理 线粒体COI基因是位于线粒体DNA的蛋白质编码基因，其长度为700 bp左右，易于扩增，进化速度较快又相对保守，既有足够的变异又便于通用引物扩增，DNA序列很少有插入与缺失现象，便于序列比对分析。利用通用引物对鱼类物种线粒体COI进行PCR扩增，得到目的片段进行纯化、测序，然后将所有序列进行两两比较并计算其差异值，根据差异值来确定物种之间的关系。6 仪器与试剂 6.1 仪器 水浴锅、恒温箱、纯水器、普通冰箱和超低温冰箱、台式高速冷冻离心机、PCR 扩增仪、水平电泳仪、微量移液器、微量核酸蛋白测定仪、紫外观察灯或凝胶成像仪、电子天平、测序仪。6.2 试剂 SZDB/Z 3152018 3 6.2.1 试剂级别 除另有规定，试验用水应为符合GB/T 6682规定的一级水，所用化学试剂均为分析纯。6.2.2 引物 用去离子水将每条引物配制成 100 mol/L 储存液，置-20以下冻存；使用时取适量配制成 10 mol/L 工作液，避免多次冻融。序列如下，引物 名称 5-3 备注 上游引物 FishF2t1 TGTAAAACGACGGCCAGTCGACTAATCATAAAGATATCGGCAC 其中下划线部分为通用测序引物 M13F（-20）VF2t1 TGTAAAACGACGGCCAGTCAACCAACCACAAAGACATTGGCAC 下游引物 FishR2t1 CAGGAAACAGCTATGACACTTCAGGGTGACCGAAGAATCAGAA 其中下划线部分为通用测序引物 M13R（-27）FR1dt1 CAGGAAACAGCTATGACACCTCAGGGTGTCCGAARAAYCARAA 6.2.3 其他试剂 醋酸铵、乙醇、异丙醇、蛋白酶 K、高保真 DNA 聚合酶、dNTPs(含 dATP、dTTP、dGTP、dCTP)、MgSO4、PCR buffer(不含 Mg2+)、溴酚蓝、标准分子量（推荐使用 100 bp DNA Marker）、琼脂糖。7 取样 7.1 取样对象 活鱼、鱼卵，鲜冻的肉块，单一鱼类制作的肉糜等。7.2 取样部位 宜取鲜活的组织，成鱼宜取但不限于肌肉组织（心、脑、脾、肾、肝、肠、胃等器官也适用），鱼卵取卵膜。如需非致死性取样，剪取部分鳍条或者刮去部分皮肤后取皮下一小块3 mm3 5 mm3的肌肉块即可。7.3 样品处理 采集的组织置于冰上低温保存备用，如需长期保存应置于-20冷藏或置于75%乙醇中固定保存。8 实验步骤 8.1 设立对照 设置空白对照、阴性对照和阳性对照。8.2 DNA 提取 取20 mg样品组织剪碎置于洁净1.5 mL离心管中，加入600 L裂解液（见附录A.1）和20 L 蛋白酶K溶液(见附录A.2)，混匀，于56水浴1-3h，期间不时轻微振动混匀；待组织消化完全，冷却至室温，加入200 L 醋酸铵溶液（见附录A.3)，混匀，冰上放置或4冷却5 min10 min，使蛋白质盐析出来；4，12 000 r/min离心10 min，将上清液转移至另一洁净的1.5mL 离心管中，4，12 000 r/min 离心10 min，取上清液至另一个洁净1.5 mL离心管中，加等体积异丙醇，轻轻摇匀，4放置15min；4，12 000 r/min离心10 min沉淀DNA；弃上清，加1 mL 75%乙醇，轻轻混匀，于4，12 000 r/min离心5min，SZDB/Z 3152018 4 弃上清，晾干；干燥后加入50 L去离子水溶解；DNA提取液应置于冰上备用，若需长期保存应置于-20保存。也可采用经验证可靠的DNA提取纯化试剂盒进行核酸提取，参照说明书使用。8.3 DNA 浓度和纯度的测定 吸取DNA提取液 2 L，以去离子水作为空白对照，使用 NanoDrop微量核酸蛋白测定仪测定 DNA 模板的质量浓度及 A260/A280比值。DNA 的质量浓度根据以下公式计算：DNA 的质量浓度=A26050稀释倍数(ng/L)当A260/A280 比值在1.7 1.9之间时，适合于PCR扩增。8.4 PCR 扩增 在0.2 mL PCR反应管中，按表1配制反应体系，加样宜按空白对照、阴性对照、待检样品、阳性对照的次序分别加入模板，盖上管盖，充分混匀。表1 PCR反应体系(50 L)组分 加样量(L)含量/浓度 10PCR Buffer（不含 Mg2+）5 1 MgCl2（25 mmol/L）5 2.5 mmol/L dNTPs（10 mmol/L each）1 0.2 mmol/L FishF2t1（10 mol/L）0.5 0.1 mol/L VF2t1（10 mol/L）0.5 0.1 mol/L FishR2t1（10 mol/L）0.5 0.1 mol/L FR1dt1（10 mol/L）0.5 0.1 mol/L 高保真 DNA 聚合酶（5 U/L）0.5 0.05 U/l 样品核酸/对照 1 50 ng 500 ng 去离子水 35.5 补充至 50L 8.5 PCR 反应程序 将已加样的PCR反应管短暂离心后放入PCR仪，扩增反应条件设定：94 预变性2 min；94 变性30 s，50退火30 s，72 延伸45 s，30个循环；72 7 min；4保存。8.6 琼脂糖电泳 用新鲜配制的1TAE电泳缓冲液（见附录A.4）配制含1 g/mL溴化乙锭（见附录A.5）的 2%琼脂糖凝胶。取适量扩增产物和溴酚蓝指示剂按比例混匀后进行电泳检测，设DNA Marker同步电泳；采用 5 V/cm8 V/cm，电泳1 h，用凝胶成像仪或紫外透射仪观察，拍照记录结果。8.7 电泳结果 当阳性对照扩增片段大小约 700bp，阴性对照和空白对照没有扩增片段时，结果成立。此时，若待测样品出现约 700bp 扩增片段则判断该样品 PCR 扩增结果阳性，无扩增片段或者片段大小不符则判断为 PCR 扩增结果阴性。8.8 序列的测定 将PCR扩增结果阳性产物进行序列测定，测序引物使用通用引物M13F（-20）和M13R（-27）。SZDB/Z 3152018 5 8.9 序列的有效性分析 通过查看序列的原始峰图，有效序列段峰高、基部杂峰少且低的序列（遵照附录B中的B.1执行）且长度大于500 bp为有效序列。将符合要求的序列进行拼接，去除引物片段后应能得到一个具有完整开放阅读框的拼接序列，并可翻译成一条完整的蛋白质序列；否则序列仅供参考（遵照附录B中的B.2执行）。8.10 序列比对鉴定 与BOLD系统或NCBI的序列进行比对。具体操作遵照附录C和附录D进行。9 结果判断 9.1 根据序列的相似度判定鱼类的种类，相似度最高且98.0者，可判定为同一种类。9.2 若相似度98.0时系统给出两个或以上的物种，需参考形态学特征进行综合判断。9.3 序列相似度98.0者，不能进行种类的判断。9.4 当 BOLD 与 NCBI 给