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DB41T 1615-2018 食用菌菌丝纤维素酶、木聚糖酶、漆酶、蛋白酶活力检测技术规程 1615 2018 食用菌 菌丝 纤维素酶 聚糖 漆酶 蛋白酶 活力 检测 技术规程
ICS 65.020.20 B 05 DB41 河南省地方标准 DB 41/T 16152018 食用菌菌丝纤维素酶、木聚糖酶、漆酶、蛋白酶活力检测技术规程 2018-06-19 发布 2018-09-19 实施河南省质量技术监督局 发 布 河南省地方标准公共服务平台河南省地方标准公共服务平台DB41/T 16152018 I 前 言 本标准按照GB/T 1.12009给出的规则起草。本标准由河南省农业科学院提出并归口。本标准起草单位:河南省农业科学院植物营养与资源环境研究所。本标准主要起草人:孔维丽、康源春、袁瑞奇、孔维威、张玉亭、胡素娟、刘芹。本标准参加起草人:段亚魁、宋志波、徐柯、崔筱、孟庆涛、韩玉娥。河南省地方标准公共服务平台河南省地方标准公共服务平台DB41/T 16152018 1 食用菌菌丝纤维素酶、木聚糖酶、漆酶、蛋白酶活力检测技术规程 1 范围 本标准规定了检测食用菌菌丝羧甲基纤维素酶、木聚糖酶、漆酶、蛋白酶活力的方法。本标准适用于食用菌菌丝培养过程中羧甲基纤维素酶、木聚糖酶、漆酶、蛋白酶活力的定性检测。2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T 6012016 化学试剂 标准滴定溶液的制备 GB/T 66822008 分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 97212006 化学试剂 分子吸收分光光度法通则(紫外和可见光部分)GB/T 127282006 食用菌术语 GBT 238742009 饲料添加剂 木聚糖酶活力的测定 GB/T 287152012 饲料添加剂酸性、中性蛋白酶活力的测定 分光光度法 NY/T 9122004 饲料添加剂 纤维素酶活力的测定 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。3.1 羧甲基纤维素酶(CMC)活力单位 在 37,pH 值为 5.5,每分钟从浓度为 0.8%的羧甲基纤维素钠溶液中水解产生 1 mmol 葡萄糖所需要的酶量为 1 个酶活力单位(U)。3.2 木聚糖酶活力单位 在 37,pH 值为 5.5,每分钟从浓度 5 mg/mL 的木聚糖溶液中水解产生 1mol 葡萄糖所需要的酶量为 1 个酶活单位(U)。3.3 蛋白酶活力单位 在 40,相应 pH 值(中性蛋白酶 pH 值=7.5,酸性蛋白酶 pH 值=3,碱性蛋白酶 pH 值=13)1 min水解酪素产生 1 g 酪氨酸所需要的酶量为 1 个酶活力单位(U)。3.4 漆酶活力单位 在室温(25 30),pH 值为 5(0.08 mol/L 醋酸钠缓冲液)条件下,每秒钟氧化 1 mmol 的 0.5 mmol/L 2,2-联氮-双-3-乙基苯并噻唑-6-磺酸(ABTS),所需的酶量为 1 个酶活力单位(U).4 仪器与设备 河南省地方标准公共服务平台DB41/T 16152018 2 分光光度计,波长 350 nm800 nm;pH 计:精度为 0.01 pH 单位;分析天平:精确至 0.0001 g 和 0.01 g;数显恒温水浴锅:精度为0.1;磁力搅拌器:温度范围 5 200;移液器:500L1000L;冰箱:0 20.5 试剂与溶液 5.1 试剂与水 所用试剂均为分析纯,水为蒸馏水。5.2 羧甲基纤维素酶(CMC)测定试剂与溶液 按NY/T 9122004中5.1、5.2、5.3、5.4、5.4、5.6、5.7的规定配制。5.3 木聚糖酶测定试剂与溶液 按 GBT 238742009 中 4.1、4.2、4.3、4.4、4.5、4.6、4.7 的规定配制。5.4 蛋白酶测定试剂与溶液 5.4.1 碳酸钠溶液(Na2CO3)0.4 mol/L 称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4 g,用水溶解并定容至 1000 mL。5.4.2 三氯乙酸(CCI3COOH)0.4 mol/L 称取三氯乙酸 65.4 g,用水溶解并定容至 1000 mL。5.4.3 氢氧化钠溶液(NaOH)0.5 mol/L 按 GB/T 6012016 的规定配制。5.4.4 盐酸溶液(HCl)1 mol/L 及 0.1 mol/L 按 GB/T 6012016 的规定制备配制。5.4.5 磷酸缓冲液 称取磷酸氢二钠(Na2HP0412H20)6.02 g 和磷酸二氢钠(NaH2PO42H20)0.50 g,加水溶解并定容至1000 mL,用 pH 计校正至 pH=7.50。5.4.6 乳酸缓冲液 甲液:称取乳酸(80%90%)10.60 g,加水溶解并定容至 1000 mL。乙液:称取乳酸钠(70%)16.0 g,加水溶解并定容至 1000 mL。使用溶液取甲液 8 mL,加乙液 1 mL,混匀,稀释一倍,即成 0.05 mol/L 乳酸缓冲溶液,用 pH 计校正至 pH=3.00。5.4.7 硼酸缓冲溶液 河南省地方标准公共服务平台DB41/T 16152018 3 甲液:称取硼酸钠(硼砂)19.08 g,加水溶解并定容至 1000 mL。乙液:称取氢氧化钠 4.00 g,加水溶解并定容至 1000 mL。取甲液 500 mL、乙液 400 mL 混匀,用水稀释至 1000 mL,用 pH 计校正至 pH=10.5。5.4.8 l0 g/L 酪素溶液 称取酪素 1.000 g,精确至 0.001 g,用少量 0.5 mol/L 氢氧化钠溶液(若酸性蛋白酶则用浓乳酸 23 滴)湿润后,加人适量的各种适宜 pH 的缓冲溶液约 80 mL,在沸水浴中边加热边搅拌,直至完全溶解,冷却后,转入 100 mL 容量瓶中,用适宜的 pH 缓冲溶液稀释至刻度。此溶液在冰箱内贮存,有效期为三天。5.4.9 l00 g/mL L-酪氨酸标准溶液 称取预先于 105 干燥至恒重的 L-酪氨酸 0.1000 g,精确至 0.0002 g,用 1 mol/L 盐酸 60 mL溶解后定容至 100 mL,即为 1 mg/mL 酪氨酸标准溶液。吸取 1mg/mL 酪氨酸标准溶液 10.00 mL,用 0.l mol/L 盐酸定容至 100mL,即得到 100 g/mL 的 L-酪氨酸标准溶液。5.5 漆酶测定试剂与溶液 5.5.1 乙酸溶液(1 mol/L)冰乙酸0.6 mL,加水溶解,定容至100 mL。5.5.2 乙酸钠溶液(1 mol/L)称取无水乙酸钠82.0g,加水溶解,定容至1000 mL。5.5.3 乙酸-乙酸钠缓冲液 称取无水乙酸钠8.2 g,加入冰乙酸0.85 mL,加水溶解,定容至1000 mL。用乙酸溶液或乙酸钠溶液调节pH=5。5.5.4 0.5 mmol/L ABTS 溶液 称取 0.2720 g ABTS 试剂,加水溶解,定容至 100 mL,随用随配。6 绘制标准曲线 6.1 CMC 活力标准曲线 按NY/T 9122004 中第7章的规定绘制标准曲线。6.2 木聚糖酶活力标准曲线 按GBT 238742009 中第6条的规定绘制标准曲线。6.3 蛋白酶活力标准曲线 按照表 1 配制不同浓度的 L-络氨酸标准溶液,以标准空白样为对照调零,于 275 nm 处测定其吸光度值 A,以 L-络氨酸浓度为横坐标,以吸光度值为纵坐标,绘制标准曲线或。根据作图或回归方程计算出当吸光度为 1 时络氨酸的量(g),即为吸光常数 K(K 值应在 130135)。河南省地方标准公共服务平台DB41/T 16152018 4 表1 检测方法及步骤 管号 取100 ug/mL络氨酸标准溶液体积/mL 水体积/mL 络氨酸标准溶液浓度/(ug/mL)0 0 10 0 1 1 9 10 2 2 8 20 3 3 7 30 4 4 6 40 5 5 5 50 6.4 漆酶活力标准曲线 按照表2配制不同浓度的ABTS标准溶液浓度,以空白标准样为对照调零,于波长420 nm处测定其吸光度值,以ABTS溶液浓度为横坐标,以吸光度值为纵坐标,绘制标准曲线。表2 ABTS 溶液标准溶液的配制 管号 ABTS试剂重量/mg 水体积/mL ABTS标准溶液浓度/(mmol/L)0 0 100 0.0 1 5.4868 100 0.1 2 10.9736 100 0.2 3 16.4604 100 0.3 4 21.947 100 0.4 5 27.434 100 0.5 6 32.9208 100 0.6 7 酶活力的测试 7.1 样品的制备 液体培养液采用 2层纱布过滤取上清液,得到待测酶液。固体原料粉碎,称量50 g,加5倍重量去离子水于三角瓶内,重复3份,25 浸提3 h,间隔1 h振荡,2层纱布过滤取上清液,得到待测酶液。7.2 CMC 活力的测定 7.2.1 酶液的稀释 待测培养液用缓冲液稀释1025倍,测定的OD值为0.50.6为宜。7.2.2 测定步骤 按 NY/T 9122004 中第 9 章操作。7.3 木聚糖酶活力的测定 7.3.1 酶液的稀释 河南省地方标准公共服务平台DB41/T 16152018 5 按7.2.1的规定操作。7.3.2 测定步骤 按GB/T 238742009 中第8章的规定操作。7.4 蛋白酶活性的测定 7.4.1 酶液的稀释 待测培养液用缓冲液稀释1050倍,测定的OD值介于0.50.6为宜。7.4.2 测定步骤 取3支具塞试管,一支为空白管,两支为样品管,按表3的测定方法及步骤操作,反应结束后,在分光光度计波长275 nm处,分别测定样品空白管和样品管中酶液的吸光度值(A0、A)。表3 测定方法及步骤 序号 反应步骤 样品管 空白管 1 加入待测酶液 1.0 mL 1.0 mL(水)2 预热2 min 3 反应底物预热3 min 4 加入底物溶液 1.0 mL 1.0 mL 5 混匀 6 40反应10 min 7 加入三氯乙酸终止液 2.0 mL 2.0 mL 8 混匀 9 静止10 min 10 过滤 总体积 4.0 mL 4.0 mL 注:表中表示此步骤需要进行。7.4.3 结果计算与表示 样品中蛋白酶活力以U表示,按式1计算:U=(A-A0)K4/10NT (1)式中:U蛋白酶活力,酶活单位(U/g)或(U/mL);A为吸光度值;K为吸光常数,当吸光度值为1时的酪氨酸的量=103.8;4反应体积,单位mL;N稀释倍数;10反应时间,单位mim T换算系数,中性、碱性蛋白酶与福林法的转换系数0.5,酸性蛋白酶系数0.77。7.5 漆酶活力的测定 7.5.1 酶液的稀释 河南省地方标准公共服务平台DB41/T 16152018 6 待测培养液用缓冲液稀释1050倍,测定的OD值在0.50.6之间为宜。7.5.2 测定步骤 取3支具塞试管,一支为空白管,两支为样品管,按表4的测定方法及步骤操作,反应结束后,在分光光度计波长420 nm处,分别测定样品空白管和样品管中酶液的吸光度值(A0、A)。表4 测定方法及步骤 序号 反应顺序 样品管 空白管 1 加入待测酶液 0.1 mL 0.1 ml(水)2 加入缓冲液 1.7 mL 1.7 mL 3 加入底物溶液 0.2 mL 0.2 mL 4 反应时间 6.0 min 6.0 min 5 加入三氯乙酸 0.5 mL 0.5 mL 总体积 2.5 mL 2.5 mL 7.5.3 结果计算与表示 样品中漆酶活力以U表示,按式2计算:U=(A-A0)/MT1000D60 (2)式中:U漆酶活力单位,酶活单位(U/g)或(U/mL);A粗酶液的吸光度值;1000mmol 与 umol 的换算系数,1 mmol=1000 umol;D稀释倍数;MABTS 分子量,M=548.68;T反应时间,单位 min;60换算系数,1 min=60 s。_ 河南省地方标准公共服务平台

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