温馨提示:
1. 部分包含数学公式或PPT动画的文件,查看预览时可能会显示错乱或异常,文件下载后无此问题,请放心下载。
2. 本文档由用户上传,版权归属用户,汇文网负责整理代发布。如果您对本文档版权有争议请及时联系客服。
3. 下载前请仔细阅读文档内容,确认文档内容符合您的需求后进行下载,若出现内容与标题不符可向本站投诉处理。
4. 下载文档时可能由于网络波动等原因无法下载或下载错误,付费完成后未能成功下载的用户请联系客服处理。
网站客服:3074922707
THPCIA
006-2022
化妆品
温和刺激性的测定
斑马鱼胚法
006
2022
温和
刺激性
测定
斑马
鱼胚法
ICS:71.100.70Y40团体标准团体标准T/HPCIA006-2022代替 T/HPCIA 006-2021化妆品 温和刺激性的测定 斑马鱼胚法Cosmetics-Mild irritation-Zebrafish(Danio rerio)embryo assay2022 年 05 月 05 日发布2022 年 05 月 05 日实施广州开发区黄埔化妆品产业协会广州开发区黄埔化妆品产业协会发布全国团体标准信息平台目录前言.31 范围.42 术语和定义.43 规范性引用文件.44 方法原理.45 生物模型.46 材料试剂.57 仪器设备.58 实验过程.59 结果计算.610 质量控制.611 废弃物处置.7附录 A(资料性附录)胚胎正常发育参考图.8附录 B(资料性附录)产卵盒参考示意图.9附录 C(资料性附录)判定标准参考图.10附录 D(资料性附录)化妆品及原料前处理参考方法.11附录 E(资料性附录)斑马鱼养鱼及维护.12全国团体标准信息平台前言本标准是GB/T 1.1-2020给出规则起草。本标准代替T/HPCIA 006-2021化妆品 温和刺激性的测定 斑马鱼胚法。本标准与T/HPCIA 006-2021相比,除编辑性修改外主要技术变化如下:增加了刺激性和无可观察效应浓度两个术语和定义;修改了实验的方法原理;修改了胚胎缓冲水的配置方法;修改了阳性对照组的储备溶液浓度;增加了预试验的实验方法;增加了视频录像的实验要求;修改了结果计算的要求;修改了结果判定的测试终点和评价指标;修改了质量控制的空白对照试验和阳性对照;增加了质量控制的溶剂对照;修改附录D(资料性附录)化妆品及原料前处理参考方法。本标准由广州开发区黄埔化妆品产业协会提出。本标准由广州开发区黄埔化妆品产业协会归口。本标准起草单位:澳思美日用化工(广州)有限公司、广州睿森生物科技有限公司、广东袋鼠妈妈生物科技有限公司、润本生物技术股份有限公司、广州市暨优生物科技有限公司、广州奥蓓斯化妆品有限公司、广州市络捷生物科技有限公司、广州易和生物科技有限公司、广州鲁比生物科技有限公司、广州度普化妆品科学研究院、皓雨(广州)化妆品制造有限公司、广东省保化检测中心有限公司、广州保化斑马鱼检测技术有限公司、广东药科大学、广东省人民医院、暨南大学化妆品与美容科学研究院。本标准主要起草人:郑伟东、梅文杰、肖德凯、黄伟雄、谢水林、孙永、王俊林、何斌、王芬、黄裕、罗欣茹、潘武、杨涛、黄晓婷、刘宁芝、袁婵龄、邹俊、黄裕、赵海山、陈小佳、王雅馨、何露露、何铭杰。本标准所代替标准历次发布情况为:T/HPCIA 006-2021。全国团体标准信息平台化妆品 温和刺激性的测定 斑马鱼胚法1 范围本标准规定了评价化妆品温和刺激性的斑马鱼胚实验的方法原理及操作。本标准适用于化妆品(膏霜、乳液、凝胶、精华等)及化妆品原料的温和刺激性评价。2 术语和定义2.1.hpf受精后小时数的英文缩写,即“hours post-fertilization”。2.2.累计死亡率 Cumulative mortality rate累计死亡胚胎数占胚胎总数的比率。2.3.摆动次数斑马鱼卵黄囊位置的移动的次数,即为摆动次数。2.4.刺激性皮肤刺激性主要表现为皮肤的疼痛或瘙痒。在 24 hpf(Prim-5 stage)时期,斑马鱼胚胎运动神经已发育,但尚未有自主运动产生,此时外界的疼痛或瘙痒刺激会使胚胎出现行为学变化。2.5.无可观察效应浓度与对照相比,对试验生物未产生显著效应的最高受试物浓度,即“no observed effect concentration;NOEC”。3 规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注明日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件,凡不注明日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。化妆品安全技术规范(2015 版)QB/T 1684-2015 化妆品检验规则DB32T 3979-2021 实验用 斑马鱼 饲育技术条件OECD 236 Fish Embryo Acute Toxicity(FET)Test4 方法原理使用 96 孔细胞培养板,在空白对照或溶剂对照控制的条件下,将 24 hpf 的斑马鱼胚胎置于受试样品中,于体式显微镜下观察(30 s 内),根据胚胎对受试样品的温和刺激性反应记录好鱼胚刺激摆动(卵黄囊位置的移动)的次数,表征样品的温和刺激性。5 生物模型5.1 成鱼采用性成熟、健康无畸形、产卵量高、产卵质量好的野生型斑马鱼 zebra fish(Danio rerio)成鱼(418 个月)进行产卵。成鱼的体长 35 cm,雄鱼体型修长,体色为柠檬色,腹部扁平。雌鱼体型丰满,腹部膨大、银亮,体色为银灰色。5.2 鱼胚实验鱼胚为处于 24 hpf 时期发育正常的受精卵,实物鉴别参考附录 A。全国团体标准信息平台5.3 鱼的养殖维护斑马鱼养殖及维护参考附录 E。6 材料试剂6.1 材料6.1.1 斑马鱼交配盒。(参考附录 B)6.1.2 胚胎收集器:100.0 mm 培养皿。(参考附录 B)细胞培养板:96 孔细胞培养板:每孔容积 200 L。6.1.3 塑料滴管:3.0 ml,长约 150.0 mm。6.2 试剂除非另有说明,分析时使用符合国家标准的分析纯试剂。6.2.1.氯化钠(NaCl)。6.2.2.碳酸氢钠(NaHCO3)。6.2.3.氯化钾(KCl)。6.2.4.无水氯化钙(CaCl2)。6.2.5.胚胎缓冲水。6.3 对照组溶液6.3.1.空白对照组:胚胎缓冲水。胚胎缓冲水配置方法:称取 7.000 g 氯化钠,0.400 g 碳酸氢钠,0.100 g 氯化钾,0.235 g 无水氯化钙溶于2 L 水配制而成。6.3.2 阳性对照组:十二烷基硫酸钠(SDS)标准储备溶液(1 mMol/L,0.29 mg/ml)。7 仪器设备7.1 斑马鱼养殖系统:包括制水、储水、供水、排水及水循坏系统。7.2 连续变倍体视显微镜(带拍照功能):最小放大倍数为目镜 230,物镜 1。7.3 恒温培养箱:温度调至 280.5。7.4 冰箱:冷藏室 2 8;冰冻室-18。7.5 电子天平:精度 0.1 mg。7.6 pH 计:测量范围 014,最小分度为 0.01 pH 单位。7.7 移液枪:0.5 l10 l、10 l100 l、100 l1000 l、1000 l5000 l。7.8 温度计:0 50。7.9 实验室一般常规器材。8 实验过程8.1 胚胎准备斑马鱼配种时,产卵盒外缸预先加入 2/3 的养殖水,接着套入带有胚胎分离作用的内缸,插入挡板,隔开雌雄两鱼。于实验前一天晚上选取大于 4 个月的性成熟的待配种斑马鱼按照 1:1 或 1:2 的雌雄比置于带有挡板的产卵盒中过夜,避光。次日早晨打开光源,抽出产卵盒的挡板使之进行交配产卵。交配 1 h 后,检查各缸成鱼产卵情况,用漏网勺收集斑马鱼交配产生的胚胎,养殖水冲洗置 90mm 培养皿中,平均每个培养皿胚胎数量不超过100 枚。清除培养皿中的异物后,放入恒温培养箱里孵育。8.2 样品前处理参考附录 D 化妆品及原料前处理方法。8.3 实验方法8.3.1 预实验全国团体标准信息平台预试验用于确定受试物的 NOEC 浓度,为后续正式试验设置提供参考。选取发育正常的 24 hpf(Prim 5 stage)的斑马鱼胚胎,放入 96 孔板中,每孔 1 颗,每组 8 孔,在不伤害胚胎的情况下除去 96 孔板中的胚胎缓冲水,向每孔迅速加入 100 L 呈浓度梯度的受试物溶液。将 96 孔板放入 28.50.5的生化培养箱中孵育 15 min 后,置于显微镜下观察斑马鱼胚胎畸形、死亡以及产生刺激性情况。随后洗去受试物溶液,换为胚胎缓冲水,继续在 28.50.5的生化培养箱中孵育 24小时后,置于显微镜下观察斑马鱼胚胎情况。以两个观察时间点下,均为观察到刺激性及明显异常为受试品的 NOEC 浓度。8.3.2 正式实验在体视显微镜下用塑料滴管随机挑选 24 hpf 发育正常的胚胎用于实验(此时的胚胎为体节期,参见附录 A)。使用 96 孔细胞培养板为实验载体,每孔加入胚胎 10 枚。用塑料吸管吸干胚胎缓冲水后,每孔加入 200 L 受试样品液于上述 96 孔细胞培养板中,静置。根据预实验结果,确定正式试验的受试品浓度范围,试验最高浓度不得高于 NOEC 值。根据测试需要,等比稀释设置受试品浓度梯度,浓度倍数不低于 2 倍。同时设置空白对照组(或溶液对照组)、阳性对照组。28.5静置 15 分钟后,于体视显微镜下(物镜 23 倍)拍摄不小于 30s 的视频,观察和记录胚胎刺激摆动(卵黄囊位置的移动)的情况。8.4 实验要求视频录像的鱼胚位于界面的正中间,鱼胚没有被人为操作所损伤。9 结果计算9.1 分别记录及计算各组别中每个平行组的胚胎(24 hpf)在 30 s 内的累计刺激摆动次数。9.2 使用 GraphPad Prism 8.0 统计分析软件(或类似功能工具)对累计刺激摆动次数进行统计分析,数值用均值标准误(MeanSEM)表示,使用 GraphPad Prism 8.0 不同组间利用 One-way ANOVA 进行显著性分析,判定 P0.05 为有显著性差异。10 结果判定以 30 s 为测试终点,胚胎刺激摆动为评价指标,见表 1。表 1 测试终点和评价指标终点反应终点评分刺激性分类评价指标鱼胚(摆动次数)(W)P0.05无刺激性W 与空白对照组相比无显著性差异P0.05有刺激性W 与空白对照组相比有显著性差异11 质量控制11.1 空白对照试验空白对照试验结果符合下列要求,结果方有效。否则,应查明原因后重新进行试验。全国团体标准信息平台a)实验开始 15 分钟内,空白对照组斑马鱼胚胎死亡率0%。11.2 阳性对照阳性对照试验结果符合下列要求,结果方有效。否则,应查明原因后重新进行试验。a)实验开始 15 分钟内,阳性对照组斑马鱼胚胎死亡率0%。b)实验开始 15 分钟内,阳性对照组摆动次数与空白组(或溶剂对照)有显著性提高。11.3 溶剂对照若设置溶剂对照,则溶剂对照试验结果符合下列要求,结果方有效。否则,应查明原因后重新进行试验。a)实验开始 15 分钟内,空白对照组斑马鱼胚胎死亡率0%。b)实验开始 15 分钟内,溶剂对照与空白对照无显著性差异。12 废弃物处置试验用斑马鱼胚于 28 冷水中灭活处理后按一般废弃物处置。具有温和刺激性的样品、含有十二烷基硫酸钠(SDS)的废液按危险废物处置。全国团体标准信息平台附录 A(资料性附录)胚胎正常发育参考图0 hpf(合子期)68 hpf(原肠期)24 hpf(体节期)48 hpf(孵化期)72 hpf(幼鱼)全国团体标准信息平台附录 B(资料性附录)产卵盒参考示意图外缸:225*115*115 mm内缸 220*110*85 mm挡板、外盖斑马鱼配种胚胎收集培养皿全国团体标准信息平台附录 C(资料性附录)判定标准参考图C1.鱼胚凝结(死亡)鉴别参考图胚胎凝结(死亡)全国团体标准信息平台附录 D(资料性附录)化妆品及原料前处理参考方法D1.水溶性原料可用胚胎缓冲液直接将受试物溶解配制成测试溶液。D2.非水溶性原料可选常用溶剂如甲醇、二甲基亚砜、乙醇等助溶。如将受试物和有机溶剂按1:1(重量 g:体积mL)混匀,超声处理 10 min,然后加入鱼胚胎培养液配制成所需浓度,震荡 30s 后于 6500g 离心 10 min。取上清液进行测试。D3.化妆品产品水溶性产品:可用鱼胚胎培养液直接将受试物溶解配制成测试溶液。非水溶性产品:可选常用溶剂如甲醇、二甲基亚砜、乙醇等助溶。如将受试物和有机溶剂按1:1(重量 g:体积 mL)混匀,超声处理 10 min,然后加入鱼胚胎培养液配制成所需浓度,震荡 30 s 后于 6500g 离心 10 min。取上清液进行测试。全国团体标准信息平台附录 E(资料性附录)斑马鱼养殖及维护E1.温度水温适宜范围: