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DB51T 2467-2018 鲫疱疹病毒II型病诊断技术规程.pdf
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DB51T 2467-2018 鲫疱疹病毒II型病诊断技术规程 2467 2018 疱疹病毒 II 诊断 技术规程
1 ICS 65.150 B 52 DB51 四川省地方标准 DB51/T 24672018 鲫疱疹病毒 II 型病诊断技术规程 2018-04-18 发布 2018-05-01 实施四川省质量技术监督局 发 布 DB51/T 24672018 I 目 次 前 言.II 1 范围.1 2 规范性引用文件.1 3 术语和定义.1 4 试剂和材料.2 5 设备和器械.2 6 临床检查.2 7 实验室样品采集.2 8 病毒的分离.2 9 病毒鉴定.3 10 综合判定.4 附录 A(规范性附录)试 剂 配 方.5 附录 B(资料性附录)CyHV-2 解旋酶基因参考序列(1446bp).6 DB51/T 24672018 II 前 言 本标准依据 GB/T 1.1-2009 给出的规定进行编写。本标准中附录A为规范性附录、附录B为资料性附录。本标准由四川省农业厅提出并归口。本标准由四川省质量技术监督局批准。本标准起草单位:四川农业大学。本标准起草人:耿毅、余泽辉、陈德芳、邓梦玲、黄小丽、欧阳萍、郑李平。DB51/T 24672018 1 鲫疱疹病毒 II 型病诊断技术规程 1 范围 本标准规定了鲫疱疹病毒II型病诊断的术语与定义、试剂和材料、临床检查、实验室样品采集、病毒分离、病毒鉴定和综合判定等技术规程。本标准适用于鲫(Carassius auratus)与金鱼疱疹病毒II型病的诊断。2 规范性引用文件 下列文件对于文件的应用时必不可少的。凡是注日期的应用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T 4789.28 食品卫生微生物学检验 染色法、培养基和试剂 GB/T 6682 分析实验室用水规格和实验方法 GB/T 18088 出入境动物检疫采样 SC/T 7014 水生动物检疫实验技术规范 SC/T 7103 水生动物产地检疫采样技术规范 3 术语和定义 下列术语和定义适用于此文件。3.1 鲫疱疹病毒 II 型 Cyprinid herpesvirus 2,CyHV-2 是一种感染鲫鱼及其变种(金鱼、异育银鲫与彩鲫等)的高致病性病毒,又称金鱼造血器官坏死病毒(Goldfish haematopoietic necrosis virus,GFHNV)或疱疹病毒性造血器官坏死病病毒(Herpesviral haematopoietic necrosis virus,HVHNV)。3.2 巢氏 PCR Nested Polymerase Chain Reaction 巢氏聚合酶链氏反应。3.3 CPE Cytopathic effect 细胞病变效应。3.4 GFF Goldenfish fin 金鱼鳍细胞系。DB51/T 24672018 2 4 试剂和材料 4.1 水 用水应符合 GB/T 6682 中一级水的规格。4.2 试剂与培养基 按 GB/T 4789.28 与 SC/T 7014 规定执行,金鱼鳍细胞系(GFF)、小牛血清(FBS)、M199营养液、青霉素、链霉素。Taq酶、dNTPs、Mix-reaction buffer、DNA分子量标准参照物(1000bp DNA Maker)与核酸提取试剂盒选用专业试剂公司提供的商品化试剂,上述未提及的见附录A。4.3 巢氏 PCR 引物 DNA 解 旋 酶 基 因 巢 氏 PCR 扩 增 引 物 外,P1-F:5-TGAAATGTCAAAAGTGGATGG-3,P1-R:5-TATTCCCAGACAGCCTTCAAA-3,扩增片段大小716bp;内引物,P2-F:5-GAACACCGCTGCTCATCATC-3,P2-R:5-ACTCTTCGCAAGTCCTCACC-3,扩增片段大小357bp。-20保存。5 设备和器械 主要设备与器械如下:解剖盘、剪刀、镊子和手术刀、组织匀浆器、普通光学显微镜、电子天平、高压灭菌锅、超净工作台、一次性滤器(0.22m)、普通冰箱、超低温冰箱、倒置显微镜、高速冷冻离心机、微量移液器、PCR扩增仪、水平电泳系统、凝胶成像系统与CO2培养箱等。6 临床检查 6.1 临床症状 病鱼离群独游,摄食减少或停止摄食,常在池塘边呈浮头状缓慢游动。6.2 外部检查 病鱼体表出血,尤其以口、鳃盖、眼球周围、下颌、鳍条基部最为明显;部分病鱼腹部膨大,眼球突出。6.3 剖检 鳃明显充血、出血,呈现典型“大红鳃”,或腐烂坏死;肝、肾肿大、出血;脾肿大,发黑。部分病鱼鳃丝苍白,鳔壁瘀斑状出血。7 实验室样品采集 样品采集按 GB/T 18088 与 SC/T 7103 执行。8 病毒的分离 DB51/T 24672018 3 8.1 样品处理 应在10C以下进行。先用组织研磨器将样品匀浆,再用细胞培养液PBS缓冲液(A.1)按1:10的最终稀释度组织悬液,加入100IU/mL双抗(青霉素、链霉素A.2)后,置4C冰箱作用1-2h后,反复冻融3次,用0.22m的一次性滤器过滤除菌,滤液保存于20或以下温度冷冻保存。8.2 细胞接种与观察 将上述滤液用细胞培养液(A.3)再做两次10倍稀释,然后将这1:10、1:100、1:1000三种稀释度的滤液,分别接种到生长24-48h的GFF单层细胞,按每2cm2的细胞单层接种100L,的中,25C吸附1-2h后弃病毒液,然后加含2%FBS和100IU/ml双抗的M199细胞培养维持营养液(A.4),置于25C培养。接种滤液后的细胞,7d内每天每天用倒置显微镜观察CPE出现情况。典型的CPE为细胞空泡、变圆、脱落。若细胞出现CPE,收集细胞液进行鉴定。若细胞在接毒后7d未出现CPE,盲传一次,再培养观察7d,未出现CPE的样品则可判定为阴性。9 病毒鉴定 9.1 样品处理 对有临床症状的病鱼,按8.1的要求取样匀浆后取50mg-100mg于1.5ml EP管中;对出现CPE的细胞培养样品取450L于1.5ml EP管中。用CyHV-2核酸作为阳性对照,无感染CyHV-2鲫鱼正常组织或无病毒感染的细胞培养物为阴性对照,用等体积的双蒸水作为空白对照。9.2 DNA 提取 DNA提取可使用商品化的组织病毒DNA抽提试剂盒(按说明书操作),或使用传统酚-氯仿提取法,具体操作如下(传统法):a)将样品置于-40冰箱反复冻融 3 次,12000r5min。b)取上清 400l,加入 500ul tris-饱和酚,充分混合,静置 5min,12000r5min,4。c)取上清加入饱和酚,氯仿各 200l,混匀,静置 5min,12000r5min,4。重复一次。d)取上清加入 200l 氯仿,混匀,12000r5min,4,此时将出现分层。如果中层蛋白多,则重复上一步骤。e)取上清加 1-2 倍体积的异丙醇,轻轻混匀,室温静置 20min,12000r5min,4。f)弃上清,用 75%酒精洗涤,12000r5min,4,重复操作一次。g)弃上清,操作台中自然晾干后,20-30lTE 溶解沉淀,-20保存,备用。9.3 巢氏 PCR 扩增反应 分两步进行,先使用外引物P1-F和P1-R进行PCR扩增,将获得的PCR产物为模板使用内引物P2-F和P2-R进行二次扩增。9.3.1 第一次 PCR 扩增反应 反应体系:12.5L Mix-reaction buffer,P1-F和P1-R各 1L(10mol/L),DNA模板2L,无菌双蒸水补足体积至25L。混匀后,3000r/min离心30s。反应条件:94C预变性5min,94C变性30s,55C 退火30s,72C 延伸40s,循环30次,最后在72C延伸10min。DB51/T 24672018 4 9.3.2 第二次 PCR 扩增反应 反应体系:12.5L Mix-reaction buffer,P2-F和P2-R引物各 1L(10umol/L),取1L第一次PCR产物为模板,无菌双蒸水补足体积至25L。混匀后,3000r/min离心30s。反应条件:同第一次PCR反应。9.4 琼脂糖凝胶电泳 用TAE电泳缓冲液(A.5)配制1的琼脂糖(A.6)平板,凝固后放入水平电泳槽,使电泳缓冲液(A.7)刚好淹没胶面。将上述6L样品和2L溴酚蓝指示剂溶液(A.8)混合后加入样品孔,使用DNA分子量标准参照物作对照。120V电泳约20 min-40min,当溴酚蓝到达底部时停止。于紫外光下观察。9.5 结果判定 第一次PCR后阳性对照出现一条716bp的DNA片段条带,阴性对照和空白对照没有该扩增条带。第二次PCR后阳性对照出现一条357bp的DNA片段条带,阴性对照和空白对照没有该扩增条带。待测样品PCR扩增后能在相应的716bpDNA位置上有带,且巢氏PCR扩增后在相应357bp位置上有带者;或者虽经PCR扩增后可能因为浓度太低看不到可见的目的条带,但第二次PCR扩增后在相应357bp位置上有带者,均可判定为阳性,无带则为阴性。若第二次PCR扩增条带大小和阳性片段接近难以确定,则进行测序,并与已知序列(附录B)比对,同源性达98%以上则为阳性,否则为阴性。10 综合判定 有临床症状,满足以下任何一条都可以确诊为CyHV-2阳性,判定患鲫疱疹病毒II型病。细胞培养出现典型CPE,巢氏PCR检测阳性;直接提取病灶组织 DNA 作为模板,巢氏 PCR 检测阳性。若没有临床症状,满足以下任何一条都可以确诊为 CyHV-2 阳性,判定为 CyHV-2 携带。细胞培养出现典型 CPE,巢氏 PCR 检测阳性;直接提取组织 DNA 作为模板,巢氏 PCR 检测阳性。DB51/T 24672018 5 A A 附 录 A(规范性附录)试 剂 配 方 A.1 PBS(0.01 mol/L,pH 7.4)800 mL超纯水中溶解 8gNaCl,0.2g KCl,3.58g Na2HPO412H2O,0.24g KH2P04,用1mol/L HCl调节pH为7.4,加超纯水定容至1L,高压灭菌,室温保存备用。A.2 双抗 将青霉素和链霉素霉素用超纯水配成各为10,000IU/mL浓度的混合储存液,经0.22m孔径的滤膜过滤后分装,-20C保存,使用时的工作浓度为100 IU/mL。A.3 M199 营养液 按说明书方法进行配制,按说明书加入一定量的NaHCO3调节营养液 pH值为7.2,定容至1L,0.22m滤器过滤除菌后分装,4C保存备用。A.4 细胞生长液(含 10%胎牛血清的M199)、细胞维持液(含 2%胎牛血清的M199)相应加入胎牛血清即可。A.5 TE缓冲液(pH8.0)将0.121g Tris碱(分子量121.1),0.0372g乙二胺四乙酸二钠(分子量372.24)加入80mL双蒸水中,加浓盐酸调节pH至8.0,加双蒸水定容至100mL,室温保存。A.6 1%琼脂糖凝胶 琼脂糖1g中加入1xTAE缓冲液100mL,加热溶解后,加入5L Goldenview混匀。A.7 50TAE电泳缓冲液 在400mL双蒸水中溶解121g Tris碱,加入28.55mL冰乙酸和50mL 0.5/L EDTA。再加双蒸水定容至500mL,室温保存。使用时,配成1TAE电泳缓冲液。A.8 溴酚蓝指示剂溶液 6上样缓冲液 将溴酚蓝100mg,加双蒸水5mL,在室温下过夜。待溶解后再称取蔗糖25g,加双蒸水溶解后移入溴酚蓝溶液中,摇匀后定容至50mL,加入NaOH溶液1滴,调至蓝色。DB51/T 24672018 6 B B 附 录 B(资料性附录)CyHV-2 解旋酶基因参考序列(1446bp)1 ATGTGCAACG TGACGGCGAG TACTCTGAAC GCTGCCGGTA TACACGCTGA CTCGAGGACC 61 ATACACAGCT ACATGGGTTT CAACACGACC GAGCTGTTGG ATCTGAACGC TTCGGACGAG 121 ACGTGGTTCC TAGCCTACAA GGAGAGACAC AAGG

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