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DB34T 1938-2013 鸭黄病毒感染诊断技术规程.pdf
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DB34T 1938-2013 鸭黄病毒感染诊断技术规程 1938 2013 鸭黄 病毒感染 诊断 技术规程
ICS 11.220 B 41 DB34 安徽省地方标准 DB 34/T 19382013 鸭黄病毒感染诊断技术规程 Technical regulation for Diagnosis of duck flavivirus infection 2013-08-28 发布 2013-09-28 实施安徽省质量技术监督局 发 布 DB34/T 19382013 I 前 言 本标准按照 GB/T 1.1-2009 给出的规则起草。本标准由安徽省农业委员会提出。本标准起草单位:安徽农业大学动物科技学院、扬州大学兽医学院、安徽省动物疫病预防与控制中心。本标准主要起草人:王桂军、朱良强、耿照玉、魏建忠、占松鹤、潘玲、汪彤、何长生、江定丰、杨德康、栗新、吴葆谊。DB34/T 19382013 1 鸭黄病毒感染诊断技术规程 1 范围 本标准规定了鸭黄病毒感染临床诊断和 PCR 检测的技术规程,其中包括流行病学、临床诊断、实验室诊断以及试验材料、操作程序及结果判定。本标准适用于临床鸭黄病毒感染的诊断和检测,PCR 检测适用于病鸭卵巢、输卵管、胰腺、脑等组织的鸭黄病毒的检测。2 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。2.1 鸭黄病毒(duck flavivirus)鸭黄病毒,又称鸭坦布苏病毒,属于黄病毒科。2010年以来,我国安徽、福建、山东、浙江、江苏等地的蛋鸭和种鸭由于鸭黄病毒感染而引起产蛋量骤然减少,给我国养鸭业造成重大经济损失。2.2 聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)PCR 技术是一种在体外酶促合成特异 DNA 片段的一种方法。由高温变性、低温退火及适温延伸等几步反应组成一个周期,经过多次循环反应,使目的 DNA 得以大量扩增。2.3 引物(primer)根据鸭黄病毒 NS1 基因设计一对特异性引物:上游引物 R1:5-CGCGGATCCTCTGGGAACGACGAGAAG-3 下游引物 R2:5-CCGGAATTCTCGGCATTGACATTTACT-3 3 仪器 PCR 仪、台式低温高速离心机、电泳仪、电泳槽、冰箱、手提紫外线灯、紫外凝胶成像仪、微量移液器、水浴箱等。4 临床诊断 4.1 发病日龄 DB34/T 19382013 2 鸭黄病毒易感染通常发生于 2540 周龄的产蛋种鸭、蛋鸭。4.2 流行特点 该病一年四季均可发生。病鸭开始出现采食量减少和产蛋量下降。产蛋率从产蛋高峰下降到 10以下,种蛋受精率降低 10左右。病鸭产蛋多为畸形蛋和软壳蛋,病死率 015。没有继发感染情况下,病程持续 1030 d,鸭群会自然康复,产蛋率也随之恢复,但一般最多可恢复到发病前的 70。4.3 临床症状 感染鸭黄病毒的鸭表现为发热、精神萎靡、站立不稳、共济失调、拉草绿色稀便、双腿瘫痪、向后或侧面伸展。产蛋期间鸭感染鸭黄病毒表现产蛋下降,后备母鸭开产前感染鸭黄病毒可致开产推迟。人工感染雏鸭最早可在 20 日龄左右发病,以神经症状为主,表现站立不稳、倒地不起、行走不稳,病鸭有饮、食欲,但多数因饮水、采食困难衰竭而死,死淘率一般在 1030。4.4 剖检病变 剖检病死鸭,可见典型病理变化有:发病鸭解剖可见肝脏肿大,脂肪肝变性严重,表面有出血斑,脾脏肿大斑驳呈大理石样;胰腺有出血和坏死;卵泡变性、畸形、坏死或液化,卵泡膜充血、出血、萎缩等症状。公鸭可见睾丸体积缩小,重量减轻,输精管萎缩。5 RT-PCR 检测 5.1 采样 无菌采集上述临床诊断为鸭黄病毒感染疑似病鸭的卵巢、输卵管、胰腺和脑组织。5.2 样品的处理 在 10以下进行样品处理。用无菌 PBS 缓冲液与样品按体积质量比 5:1 将样品研磨匀浆。将样品匀浆放置于-20中冷冻,再室温融解,反复三次。5.3 RNA 抽提 在含有样品的塑料离心管中加入 600L 抽提液 A(1 mol/L Tris 水溶液饱和酚:三氯甲烷:异戊醇按照 25:24:1 的混合液),用力混合至少 30 s,12000r/min 离心 5 min,小心取上层水相(约 800L),再加入700L抽提液B(三氯甲烷/异戊醇按 24:1 的比例混合液),用力混合至少 30 s,12000r/min 离心 5 min,小心取上层水相(约 600L)。再加入-20预冷的 1.5 倍体积的无水乙醉(约 900L),倒置数次混匀后。12000r/min 离心 30 min,小心弃去上清。干澡后加 10L 水溶解,用作模板。5.4 变性和退火 在 PCR 管中加入 10L 模板和 2.5L 引物 R2,加 2.5L 水使总体积为 15L,置于 70反应 5 min。立即冰浴 2 min,低速离心约 5 s。5.5 cDNA 合成 DB34/T 19382013 3 在上述反应管中继续加入 5L 的 5 倍逆转录酶浓缩缓冲液,2.5 mmol dNTPs 2L,O.5L RNA酶抑制剂(20 U),1L 逆转录酶 M-MLV(10 U)和 1.5L 水。37水浴 1 h,合成 cDNA 链。完成后进行下一步反应。5.6 PCR 扩增 DNA PCR 为 50L 体系,包括:双蒸灭菌水 37.5L 反转录产物 4L 上游引物 0.5L 下游引物 0.5L 10PCR Buffer 5L 2.5 mmol dNTPs 2L Taq 酶 0.5L 首先加入双蒸灭菌水,然后再按照顺序逐一加入上述成分,每一次要加入到液面以下。全部加完后,混悬,瞬时离心,使液体都沉降到 PCR 管底。在每个 PCR 管中加入 1 滴液体石蜡(约 20 L)。循环参数为 95 5 min,94 30 s,51 30 s,72 45 s,循环 30 次,72延伸 10 min。5.7 电泳 5.7.1 制备 1.0琼脂糖凝胶板 5.7.2 取 5L PCR 产物,与 0.5L 加样缓冲液混合,加入琼脂糖凝胶板的加样孔中。5.7.3 加入分子量标准。5.7.4 盖好电泳仪,插好电极,将电压调至 90V 左右电泳,3040 min。5.7.5 在手提紫外线灯下观察;或者用紫外凝胶成像仪扫描图片存档,打印。5.7.6 用分子量标准比较,判断 PCR 片段大小。5.8 设立对照 5.8.1 从样品处理开始设立阳性对照、阴性对照和空白对照。5.8.2 取含有鸭黄病毒 AH-F10 株(中国典型培养物保藏中心,保藏号 CCTCC V201213)的禽胚尿囊液或细胞悬液为标准阳性对照。5.8.3 取正常的阴性组织为模板作阴性对照。5.8.4 取等体积水代替样品为模板作空白对照。5.9 PCR 检测结果 5.9.1 在阳性对照出现相应大小扩增带、阴性对照及空白对照无此带出现的情况下判定结果;5.9.2 结果出现大小约 260 bp 扩增片段时,初步判定为鸭黄病毒阳性;5.9.3 未出现大小约 260 bp 扩增片段或片段大小与目的片段大小不符,判定为阴性。6 结果判定 6.1 临床诊断符合 4.1、4.2、4.3、4.4,初步判定为鸭黄病毒感染疑似病例;6.2 RT-PCR 检测结果符合 5.9.2,初步判定为鸭黄病毒感染疑似病例;6.3 诊断结果符合 6.1、6.2,确诊为鸭黄病毒感染阳性。_

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