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DB34T 3208-2018 羊传染性脓疮病毒分离鉴定技术规程.pdf
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DB34T 3208-2018 羊传染性脓疮病毒分离鉴定技术规程 3208 2018 传染性 脓疮 病毒 分离 鉴定 技术规程
ICS 11.220 B 41 DB34 安徽省地方标准 DB 34/T 32082018 羊传染性脓疮病毒分离鉴定技术规程 Technical Regulation for Isolation and Identification of Goat Contagious Ecthyma Virus 文稿版次选择 2018-10-20 发布 2018-11-20 实施安徽省质量技术监督局 发 布 DB34/T 32082018 I 前 言 本标准按照 GB/T 1.1-2009 给出的规则起草。本标准由安徽农业大学提出。本标准由安徽省农业标准化技术委员会归口。本标准起草单位:安徽农业大学、安徽省动物疫病预防与控制中心、安徽东方帝维生物制品股份有限公司、安徽省动物卫生监督所、阜阳市动物卫生监督所、亳州市谯城区畜牧兽医局、旌德县畜牧兽医局、阜南县动物疫病预防与控制中心、肥东县动物疫病预防与控制中心、宿州市动物疫病预防与控制中心 本标准主要起草人:王桂军、占松鹤、李雪松、祁克宗、朱良强、张星、张利亚、涂健、徐前明、方保根、冯育宁、陈静、郑举、方定平、兰梦蝶、刘雪梅、周迎春、王军、王楠楠、杨德康、车跃光。DB34/T 32082018 1 羊传染性脓疮病毒分离鉴定技术规程 1 范围 本标准规定了羊传染性脓疮病毒病料采集与处理、病毒分离及病毒鉴定技术要点。本标准适用于羊传染性脓疮病毒的分离与鉴定。2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。NY/T 541 兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范 3 试验材料、试剂和仪器 3.1 材料 增殖表皮癌细胞(HeLa)、羊睾丸原代细胞(Lamb testis cells,LT)、DMEM 培养基、M199 液体培养基、胎牛血清、胰蛋白酶、0.01 mol/L pH 7.07.4 磷酸盐缓冲液(PBS)、青霉素、链霉素。3.2 试剂 DNA 提取试剂盒、50 TAE 缓冲液、琼脂糖。3.3 仪器 细胞培养箱、生物安全柜、高速冷冻离心机、PCR 仪、电泳仪、紫外凝胶成像系统。4 样品采集与处理 4.1 样品的采集 按照 NY/T 541 的规定执行,无菌采集疑似羊传染性脓疮病毒感染的病羊口唇、蹄部痂皮。4.2 样品的保存 样品应置于-80冷冻保存。4.3 样品的处理 先将病料组织剪碎、研磨,用灭菌 PBS 与样品按体积质量比 51 匀浆,将样品匀浆冻存后再室温融解,反复三次。经 5000 r/min 离心 10 min,取上清,并加入青霉素和链霉素,终浓度为 2000 IU/mL,0.22 m 过滤除菌,置于-80待用。DB34/T 32082018 2 5 病毒分离 5.1 传代细胞培养 使用 DMEM 培养液复苏 HeLa 细胞,取 T25 细胞培养瓶密度达到 80的单层 HeLa 细胞,弃去培养液,用灭菌 PBS 清洗三次,接种 1 mL 处理好的样品,于 5CO2 培养箱,37下吸附 2 h,期间每隔 30 min 轻轻摇晃一次。弃去样品液,用灭菌 PBS 清洗三次,加入 5 mL 细胞维持液(血清含量为 2),培养箱内继续培养 5 d。在培养过程中每日观察细胞病变(CPE)产生情况,如出现 CPE(特征病变为:细胞间隙增大、细胞核固缩、细胞圆化脱落),收集细胞培养上清及细胞裂解液。同时设立空白对照(见图1)。A:病变的HeLa细胞;B:对照细胞 图1 接种后第 72 小时病变的 HeLa 细胞和对照细胞 10 5.2 原代细胞培养 5.2.1 原代细胞制作 选择 23 月龄健康雄性绵羊,无菌摘取睾丸,并浸泡于含双抗的 M199 培养基中保存,将睾丸组织放入平皿中,剥弃髓鞘及白膜,除去脂肪层,用含双抗的灭菌 PBS 清洗 23 次,放入烧杯中将睾丸组织剪碎,用含双抗的灭菌 PBS 清洗直至液体清亮,弃去液体,将组织倒入装有玻璃珠的三角瓶中,按组织量的 4 倍加入胰酶消化液,37消化 30 min,至睾丸组织呈蓬松状,加入 M199 培养液清洗,将胰酶消化液彻底冲洗干净,加入适量生长液(含 10血清的 M199 培养基),用玻璃珠振荡法分散细胞,6 层纱布进行过滤,取滤液进行细胞计数,用生长液将细胞密度调整为 100150 万个/mL的细胞悬液,7 mL/瓶(T25 细胞培养瓶),置 37、5 CO2 培养箱中进行培养。5.2.2 病毒分离 使用 M199 培养液培养 LT 细胞,取 T25 细胞培养瓶密度达到 80的单层 LT 细胞,弃去培养液,用灭菌 PBS 清洗三次,接种 1 mL 处理好的样品,于 5CO2 培养箱,37下吸附 1 h,期间每隔 15 min轻轻摇晃一次。吸附完成后,弃去样品液,用灭菌 PBS 清洗三次,加入 5 mL 细胞维持液(血清含量为 2),培养箱内继续培养 4 d。在培养过程中每日观察 CPE 产生情况,如出现 CPE,收集细胞培养上清及细胞裂解液。同时设立空白对照(见图2)。DB34/T 32082018 3 A:病变的羊睾丸原代细胞;B:对照细胞 图2 接种后第 72 小时病变的羊睾丸原代细胞和对照细胞 100 6 病毒 PCR 检测 6.1 引物 B2L gene 上游引物:5-CGGGATCCATGTGGCCGTTCTCCTCCAT-3 B2L gene 下游引物:5-CGGAATTCTTAATTTATTGGTTTGCAGAACTCC-3 6.2 病毒 DNA 提取与 PCR 检测 利用 DNA 提取试剂盒提取待测样品以及羊痘阳性病料 DNA,以此作为 PCR 扩增模板。PCR 扩增反应条件:94预变性 3 min;9445s,5845s,7270s,30 个循环;最后 72延伸 10 min。取 PCR 产物用 10 g/L 琼脂糖凝胶进行电泳检测,阳性结果为在 1137 bp 处扩增出特异性条带(见图3)。图中:M DL 2000Marker;1 待检样品;2 羊痘阳性病料;3 阴性对照。图3 B2L 基因的 PCR 扩增 7 结果判定 DB34/T 32082018 4 7.1 HeLa 细胞接种病料 72 h 后,开始出现细胞核固缩、细胞圆化脱落。7.2 羊睾丸原代细胞接种病料 72 h 后,开始出现细胞核固缩、细胞圆化脱落。7.3 PCR 检测结果得到与理论上 B2L 基因片段大小(1137 bp)相符的目的条带大小目的片段时,且羊痘阳性病料未出现条带,初步判定为羊传染性脓疮病毒阳性,结果具有特异性。7.4 符合结果判定 7.3,且符合 7.1 或 7.2 时,可确诊被检羊感染羊传染性脓疮病毒。_

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