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DB32T 2608-2013 猪流行性乙型脑炎诊断技术.pdf
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DB32T 2608-2013 猪流行性乙型脑炎诊断技术 2608 2013 流行性 脑炎 诊断 技术
ICS65.020.30 B22 备案号:40494-2014 江苏省地方标准 DB32DB32/T 2608-2013 猪流行性乙型脑炎诊断技术 Diagnostic Techniques for Japanese Encephalitis of Swine 2013-12-20 发布 2014-01-20 实施江苏省质量技术监督局 发 布 DB32/T 2608-2013 前 言 为规范猪乙型脑炎诊断技术,特制定本标准。本标准按GB/T 1.12009标准化工作导则 第1部分:标准的结构和编写进行编制。本标准由江苏省农业科学院提出。本标准起草单位:江苏省农业科学院。本标准起草人:张雪寒、何孔旺、王小敏、郭容利、倪艳秀、李彬、温立斌、周俊明、俞正玉。DB32/T 2608-2013 1 猪乙型脑炎诊断技术 1 范围 本标准规定了猪乙型脑炎的诊断技术。本标准规定的分离鉴定,间接免疫荧光技术和RT-LAMP法适用于本病的确诊,RT-LAMP适用于大批量样品的普查。2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修订单)适用于本文件。GB 16548 病害动物和病害动物产品生物安全处理规程 GB/T 6682-2008 分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 18638 流行性乙型脑炎诊断技术 NY/T 541 动物疫病实验室检验采样方法 3 流行病学诊断 3.1 易感动物 多种动物可感染乙型脑炎病毒,多呈隐性感染,但可成为传染源。猪是乙型脑炎的重要传染源,不同年龄段的猪均能够感染,但临床症状有所不同。成年猪感染后可造成严重的生殖障碍。3.2 易感季节 本病的发生有明显的季节性,每年7-9月份发病率最高。3.3 传播媒介 蚊虫叮咬是乙型脑炎病毒传播的主要媒介。消灭传播媒介蚊虫是本病的主要预防措施。4 临床诊断 猪流行性乙型脑炎是一种发病率高死亡率低的繁殖障碍性传染病,临床症状为高热、沉郁或狂暴、意识障碍、抽搐、呼吸衰竭和脑膜刺激症。感染乙脑病毒病猪症状主要表现为繁殖障碍:母猪表现为流产、死胎、木乃伊胎;公猪多表现为单侧睾丸炎,精液品质不良,失去配种能力。5 病理学诊断 公猪睾丸不同程度肿大,切面可见睾丸实质充血、出血,并有许多颗粒状的突起,有明显的黄色坏死灶。慢性病例睾丸内萎缩硬化,缩到如鸡蛋大,与阴囊粘连,睾丸实质大部分结缔组织化。流产母猪子宫内膜显著充血,粘膜上覆有粘稠的分泌物,膜面有少数小点状出血。子宫粘膜下组织水肿,胎盘呈炎性浸润。本死胎很少发生腐败。一般在体躯后部皮下有弥漫性水肿,全身肌肉退色,好像水煮肉。胸腔和心包常有积液,实质器官浊肿及散发小出血点。脑膜和脊髓硬膜有出血。DB32/T 2608-2013 2 6 病原学诊断 6.1 病毒分离 6.1.1 材料准备 除另有规定,所用试剂均为分析纯,水为符合GB/T 66822008的灭菌二级水。PBS,DMEM,兔抗猪乙型脑炎病毒高免血清和健康兔血清。6.1.2 病料采集 按NY/T 541规定的方法采样。疑似JE病例,流产胎儿、死胎、木乃伊胎等的脑组织,以及公猪精液和猪舍蚊子等靶组织样品。将猪脑组织或蚊子(50-100只/次)分别置于研钵中,加入PBS反复研磨,直至样品研磨成匀浆、组织碎片基本消失为止。将研磨液分装于1.5 mL EP管中,-70 冰箱反复冻融3次,4 12000 r/min离心5 min,取上清液,经一次性滤器(孔径0.22 m)过滤后,-70保存备用。公猪精液的预处理仅是省去研磨过程,其他步骤与猪脑组织或蚊子的预处理一致。6.1.3 细胞培养 取培养至单层的BHK-21细胞,用PBS洗3次后,加入过滤的病料上清液1.01.2 mL,37细胞培养箱中吸附1.5 h,期间每隔20 min轻摇细胞瓶1次。弃上清液,用PBS洗1次后加入2%维持液,置5%CO2、37 细胞培养箱中培养35 d,每天观察细胞病变(CPE)。如无CPE则于接毒后5 d收毒,盲传35代。6.1.4 乳鼠接种 每只乳鼠脑内接种30.0 L或脑内兼腹腔各注射30.0 L过滤的病料上清,对照组脑内注射生理盐水30.0 L。每天观察小鼠精神状态23次,连续23周。待小鼠出现神经症状后(若无症状者则于接毒3周后)无菌剖取鼠脑,加入适量PBS研磨成乳液,反复冻融离心后,取上清液用0.22 m滤器过滤,再次接种乳鼠连续传代。6.2 病毒鉴定 6.2.1 免疫荧光鉴定 在 24 孔细胞培养板中接毒,培养 4872 h 后,弃原液,用 PBS 冲洗后加入-20 预冷的丙酮,室温下固定 10 min;PBS 冲洗,加入稀释好的猪 JEV 阳性血清,置 37湿盒中孵育 1 h;PBS 冲洗,加入已稀释的荧光素标记的兔抗猪抗体,37湿盒中作用 1h;PBS 冲洗后加入甘油缓冲液,于倒置荧光显微镜下观察。同时设阴性对照。6.2.2 反转录-环介导等温扩增法(RT-LAMP)鉴定 上述制备的病料,用商品化试剂盒提取RNA,作为RT-LAMP模板。根据JEV囊膜糖蛋白E基因6个特异性区域设计4条引物:F3和B3为外引物;FIP和BIP为内引物。F3:5-CAACATTGCACGTCCGCAT-3;B3:5-AAGTCCACATCCGATGCC-3;FIP:5-CCACCGTCGAGTTGTCAGTGACTTTTCGAAGCTAGCGAACTTGCT-3;BIP:5-CACGACTGGAGATGCGCACAATTTTCCCACGGTCACTGAAGCCTT-3。外引物扩增产物为245bp。LAMP扩增产物在电泳图谱上表现为大小不一的梯状条带。RT-LAMP的扩增条件:65水浴锅中放置70min。优化后的反应体系中:含有0.2M F3、B3,2M FIP、BIP,0.8M dNTPs,20mM Tris-HCl(pH8.8),10mM KCl,10mM(NH4)2SO4,6mM Mg2+,0.1%Triton X-100,1.1mM甜菜碱,8U BST 聚合酶,1U AMV反转录酶,再加入5L的模板RNA。加入钙黄绿素荧光染料,肉眼观察结果,绿色,判为阳性,橙色,判为阴性。以1.5琼脂糖凝胶电泳,出现梯状条带,判为阳性,无条带,判为阴性。并用建立的RT-LAMP方法扩增猪瘟(CSFV),蓝耳病毒(PRRSV),圆环病毒(PCV2)、伪狂犬病毒(PRV)、细小病毒(PPV)、传染性胃肠炎病毒(TGEV)、传染性腹泻病毒(PEDV)和轮状病毒(RV)以检验其特异性。DB32/T 2608-2013 3 6.3 结果判定 以上实验为阳性,判为猪乙型脑炎病毒。7 最终结论判定 下列任何情况之一,均可判为猪乙型脑炎:7.1 发病有明显季节性,并主要发生在夏季,以7-9月份为主、个体临床表现明显,病例解剖病变典型,用第6章中任何一种试验确诊为猪乙型脑炎病毒阳性者。7.2 临床症状和发病情况不详,群体解剖检查病变典型,用第6章中任何一种实验确诊为猪乙型脑炎病毒阳性者。7.3 发病情况、临床症状、病理变化不详,如用第6章中任何一种实验确诊为猪乙型脑炎病毒阳性者。

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