GBT 18932.27-2005 蜂蜜中泰乐菌素残留量测定方法 酶联免疫法.pdf

I CS 6 7.1 8 0.1 0X 3 1荡黯中 华 人 民 共 和 国 国 家 标 准G B/T 1 8 9 3 2.2 7-2 0 0 5蜂蜜中泰乐菌素残留量测定方法 酶 联 免 疫 法Me t h o d f o r t h e d e t e r m i n a t i o n o f t y l o s i n r e s i d u e i n h o n e y-E n z y me-l i n k e d i mmu n o s o r b e n t a s s a y me t h o d2 0 0 5-0 2-0 4发布2 0 0 5-0 8-0 1 实施中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局中 国 国 家 标 准 化 管 理 委 员 会发 布GB/T 1 8 9 3 2.2 7-2 0 0 5月9吕G B/T 1 8 9 3 2 本部分的附录A为资料性附录。本部分由中华人民共和国秦皇岛出人境检验检疫局提出。本部分由中 华全国 供销合作总社归口。本部分起草单位:中华人民共和国秦皇岛出人境检验检疫局。本部分主要起草人:庞国芳、付宝莲、张进杰、肖艳霞本部分系首次发布的国家标准。GB/T 1 8 9 3 2.2 7-2 0 0 5蜂蜜中泰乐菌素残 留量测定方法 酶 联 免 疫 法范围G B/T 1 8 9 3 2 的本部分规定了蜂蜜中泰乐菌素残留量酶联免疫测定方法。本部分适用于蜂蜜中泰乐菌素残留量的测定。本部分的方法检出限:泰乐菌素为1 0.0 1 z g/k g,2规范 性引用文件 下列文件中的条款通过 G B/T 1 8 9 3 2 的本部分的引用而成为本部分的条款。凡是注日期的引用文件，其随后所有的修改单(不包括勘误的内容)或修订版均不适用于本部分，然而，鼓励根据本部分达成协议的各方研究是否可使用这些文件的最新版本。凡是不注 日期的引用文件，其最新版本适用于本部分。G B/T 6 3 7 9 测试方法的精密度通过实验室间试验确定标准测试方法的重现性和再现性(GB/T 6 3 7 9-1 9 8 6,n e q I S O 5 7 2 5:1 9 8 1)G B/T 6 6 8 2 分析实验室用水规格和试验方法(G B/T 6 6 8 2-1 9 9 2,n e q I S O 3 6 9 6;1 9 8 7)3 原理 试样中残留的泰乐菌素与试剂盒中的泰乐菌素酶标记物共同竞争泰乐菌素抗体，形成的酶标记抗原抗体复合物与显色剂发生反应，用酶标仪测定吸光度，根据吸光度值得出试样中泰乐菌素的含量。试荆和材料4.1 泰乐菌素试剂盒:4.1.1 9 6孔板:1 2条 X8孔。4.1.2 泰乐菌素标准溶液。4.1.3 标准和样品缓冲溶液:浓缩液。4.1.4 泰乐菌素酶标记物。4.1.5 酶标记物缓冲溶液4.1.6 洗板溶液:浓缩液。4.1.7 显色剂。4.1.8 反应停止液。4.2 缓冲溶液:将标准和样品缓冲溶液(4,7.3)按泰乐菌素试剂盒(4.1)中规定的比例用水稀释，混匀后备用。4.3 泰乐菌素标准工作溶液:根据泰乐菌素试剂盒的线性范围，用稀释的缓冲溶液(4.2)将泰乐菌素标准溶液(4.1.2)稀释成不同浓度(p g/1.)的标准工作溶液。每次测定均应现配现用。4.4 泰乐菌素酶标记物溶液:根据泰乐菌素试剂盒中说明，用酶标记物缓冲溶液(4.1.5)将泰乐菌素酶标记物(4.1.4)溶解，混匀后备用。4.5 洗板工作溶液:将洗板溶液(4.1.6)按泰乐菌素试剂盒中规定的比例用水稀释，混匀后备用。4.6水.GB/T 6 6 8 2规宁的一级水GB/T 1 8 9 3 2.2 7-2 0 0 55仪器5.1 酶标仪。5.2 8道移液器:5 0 p L-3 0 0 p L,5.3 单道移液器:5 F L -5 0 V I-1 0 0 I 一1 0 0 0 P I和2 ml-O m L.5.4 液体混匀器。5.5 离心机5.6 注射过滤器:2 m L，并带有孔径为。.4 5 p m的水相针头式过滤膜。5.7 具塞试管:1 0 m工，2 0 m工。6 试样的制备与保存6.1 试样的制备 对无结晶的实验室样品，将其搅拌均匀。对有结晶的实验室样品，在密闭的情况下，置于不超过6 0 的水浴中温热、振荡，待样品全部融化后搅匀，冷却至室温，分出。.5 k g作为试样。制备好的试样置于样品瓶中，密封，并加以标识。6.2 试样的保存 将样品于室温下保存7分析步骤7.1 提取 称取 I g试样，精确到。.0 1 g，置于2 0 m工，具塞试管中，加人9 mL缓冲溶液(4.2)于液体混匀器上快速混匀 I mi n，使试样完全溶解，以3 0 0 0 r/mi n 离心 1 0 m i n后，取适量的样品上清溶液用注射过滤器过滤至 1 0 m1 一 的具塞试管中，供酶标仪测定。此溶液稀释系数为 1 0 07.2 测定条件 以下所有操作应在2 0 0C-2 4 室温下进行7.2.1 酶标仪测定条件:酶标仪测定波长为 4 5 0 n m.7.2.2 人工洗板条件:洗涤次数五次以上，每次注水量为 2 5 0 川7.2.3 泰乐菌素试剂盒中所有试剂的温度均应回升至室温(2 0 0 C-2 4 0C)后方可使用。7.2.4 将测定需用的微孔板(4.1.1)备齐并插人微孔架上，记录标准及样品等在微孔架上的位置(模板图)。7.3测定 测定中吸取不同的试剂和样品溶液时应更换吸头。7 A.1 分别吸取 5 0川 泰乐菌素标准工作溶液(4.3)和样品溶液等，按模板图位置依次加人各 自的微孔底部。7.3 _ 2分别吸取 1 0 0 I L泰乐菌素酶标记物溶液(4.4)于每一个微孔底部，然后，用封口膜密封孔口以防溶液挥发。持微孔板在台面上以圆周运动方式混匀后，于 2 0 C-2 4 避光孵育 1 0 mi n a7.3.3 倒出孔中的液体，将微孔架反扣在吸水纸上反复拍打，以除去孔中过多的残液，但不能使微孔干燥，然后，立即用洗板Z作溶液(4.5)按7.2.2要求进行洗板，每次弃去洗板溶液后，均应将微孔架反扣在吸水纸上反复拍打，以除去孔中过多的残液，但不能使微孔千燥。7.3.4 迅速加人1 0 0 川 显色剂(4.1.7)于每一个微孔底部，然后，持微孔板在台面上以圆 周运动方式混匀后，于2 0 0C-2 4 0 C 避光孵育 1 0 mi n.7.3.5 迅速加人 1 0 0川 反应停止液(4方式混匀后，将微孔架置于酶标仪中，在 21.8)于每一个微孔底部，然后，持微孔板在台面上以圆周运动4 5 0 n m处测量吸光度(加人反应停止液后应在 6 0 mi n内读取GB/T 1 8 9 3 2.2 7-2 0 0 5吸光度)。7.4 平行试验 按以上步骤，对同一标准、同一样品溶液均应进行平行试验测定。7.5 空白试验 除不称取试样外，均按上述步骤进行。7.6 监控试验 每次测定均应做一个添加泰乐菌素标准的显色剂样品。8结果计算 在半对数坐标纸上，以吸光度值为纵坐标(%)，泰乐菌素标准工作溶液浓度(ti g/1)为横坐标，绘制标准工作曲线。从标准工作曲线上得到试样中相应的泰乐菌素浓度后，结果按公式(1)计算:1 0 0 01 0 0 0.。一(1)V一阴 C 一一 X式中:X 试样中 泰乐菌素 残留量，单位为 微克 每千克()t g/k g);c 从标准工作曲线上得到的试样中泰乐菌素浓度，单位为微克每升(p g/L);V 样品溶液的体积，单位为毫升(ML);m 样品 溶液所含的试样质量，单位为克(9)。结果表示到小数点后两位。注:计算结果应扣除空白值9确证试验 如被测样品中泰乐菌素残留量的值大于检出限时，应用 L C-MS-MS法进行确证。1 0 精 密度 本部分的精密度数据是按照G B/T 6 3 7 9 的规定确定的，其重复性和再现性的值是以9 5%的可信度来计算。1 0.1 重复性 在重复 性条件下，蜂蜜中 泰乐菌素的含 量在1 0.0 g/k g-1 0 0.0 g g/k g 范围时，获得的 两次独立测试结果的绝对差值不超过重复性限(r)，本部分的重复性限按方程式(2)计算:1 g r=1.2 8 5 5烤m一1.7 5 2 9 (2)式中:n 3 两次测定值的 平均值，单位为微克每千克(f+g/k g).如果差值超过重复性限，应舍弃试验结果并重新完成两次单个试验的测定。1 0.2 再现性 在再现性条件下，蜂蜜中泰乐菌素的含量在1 0.0 p g/k g-1 0 0.0 p g/k g 范围时，获得的两次独立测试结果的绝对差值不超过再现性(R)，本部分的再现性限按方程式(3)计算:R=0.1 2 1 7 m -0.7 1 7 6 (3)式中:m 两次测定值的平均值，单位为微克每千克(u g/k g).GB/T 1 8 9 3 2.2 7-2 0 0 5 附录A(资料性 附录)回收率本方法中泰乐菌素添加浓度及回收率的试验数据:在添加量为 1 0.0 p g/k g 时，平均回收率为 9 7.2 0%.在添加量为3 0.0 t g/k g 时，平均回收率为1 0 2.5 0%.在添加量为5 0.0 i g/k g 时，平均回收率为9 7.8 0 Y.在添加量为 1 0 0.0 k g/k g时，平均回收率为 1 0 4.3 5%.