GB
5009.185-2016
食品安全国家标准
食品中展青霉素的测定
5009.185
2016
食品安全
国家标准
食品
青霉素
测定
中 华 人 民 共 和 国 国 家 标 准G B5 0 0 9.1 8 52 0 1 6食品安全国家标准食品中展青霉素的测定2 0 1 6-1 2-2 3发布2 0 1 7-0 6-2 3实施中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会国 家 食 品 药 品 监 督 管 理 总 局发 布G B5 0 0 9.1 8 52 0 1 6 前 言 本标准代替G B/T5 0 0 9.1 8 52 0 0 3 苹果和山楂制品中展青霉素的测定、NY/T1 6 5 02 0 0 8 苹果及山楂制品中展青霉素的测定 高效液相色谱法、S N/T2 0 0 82 0 0 7 进出口果汁中棒曲霉毒素的检测方法 高效液相色谱法 和S N/T2 5 3 42 0 1 0 进出口水果和蔬菜制品中展青霉素含量检测方法 液相色谱-质谱/质谱法与高效液相色谱法 和S N/T1 8 5 92 0 0 7 饮料中棒曲霉素和5-羟甲基糠醛的测定方法 液相色谱-质谱法和气相色谱-质谱法 中展青霉素部分。本标准与G B/T5 0 0 9.1 8 52 0 0 3相比,主要变化如下:标准名称修改为“食品安全国家标准 食品中展青霉素的测定”;增加了同位素稀释-液相色谱-串联质谱法;增加了液相色谱法;扩大了适用范围;删除了薄层色谱法。G B5 0 0 9.1 8 52 0 1 61 食品安全国家标准食品中展青霉素的测定1 范围本标准规定了食品中展青霉素的测定方法。本标准第一法为同位素稀释-液相色谱串联质谱法,适用于苹果和山楂为原料的水果及其制品、果蔬汁类和酒类食品中展青霉素含量的测定。本标准第二法为高效液相色谱法,适用于苹果为原料的水果及其果蔬汁类和酒类食品中展青霉素含量的测定。第一法 同位素稀释-液相色谱-串联质谱法2 原理样品(浊汁、半流体及固体样品用果胶酶酶解处理)中的展青霉素经溶剂提取,展青霉素固相净化柱或混合型阴离子交换柱净化、浓缩后,经反相液相色谱柱分离,电喷雾离子源离子化,多反应离子监测检测,内标法定量。3 试剂和材料除非另有说明,本方法使用的试剂均为分析纯,水为G B/T6 6 8 2规定的一级水。3.1 试剂3.1.1 乙腈(CH3C N):色谱纯。3.1.2 甲醇(CH3OH):色谱纯。3.1.3 乙酸(CH3C OOH):色谱纯。3.1.4 乙酸铵(CH3C OONH4)。3.1.5 果胶酶(液体):活性15 0 0U/g,28避光保存。3.2 试剂配制3.2.1 乙酸溶液:取1 0m L乙酸加入2 5 0m L水,混匀。3.2.2 乙酸铵溶液(5mm o l/L):称取0.3 8g乙酸铵,加10 0 0m L水溶解。3.3 标准品3.3.1 展青霉素标准品(C7H6O4,C A S号:1 4 9-2 9-1):纯度9 9%,或经国家认证并授予标准物质证书的标准物质。3.3.2 1 3C7-展青霉素同位素内标:2 5g/m L,或经国家认证并授予标准物质证书的标准物质。G B5 0 0 9.1 8 52 0 1 62 3.4 标准溶液配制3.4.1 标准储备溶液(1 0 0g/m L):用2m L乙腈溶解展青霉素标准品1.0m g后,移入1 0m L的容量瓶,乙腈定容至刻度。溶液转移至试剂瓶中后,在-2 0 下冷冻保存,备用,有效期6个月。展青霉素标准溶液浓度的标定参见附录A。3.4.2 标准工作液(1g/m L):准确吸取1 0 0L经标定过的展青霉素标准储备溶液至1 0m L容量瓶中,用乙酸溶液定容至刻度。溶液转移至试剂瓶中后,在4下避光保存,有效期3个月。3.4.3 1 3C7-展青霉素同位素内标工作液(1g/m L):准确移取展青霉素同位素内标(2 5g/m L)0.4 0m L至1 0m L容量瓶中,用乙酸溶液定容。在4下避光保存,备用,3个月内有效。3.4.4 标准系列工作溶液:分别准确移取标准工作液适量至1 0m L容量瓶中,加入5 0 0L1.0g/m L的同位素内标工作液,用乙酸溶液定容至刻度,配制展青霉素浓度为5n g/m L、1 0n g/m L、2 5n g/m L、5 0n g/m L、1 0 0n g/m L、1 5 0n g/m L、2 0 0n g/m L、2 5 0n g/m L系列标准溶液。4 仪器和设备4.1 液相色谱-质谱联用仪:带电喷雾离子源。4.2 匀浆机。4.3 高速粉碎机。4.4 组织捣碎机。4.5 涡旋振荡器。4.6 p H计:测量精度0.0 2。4.7 天平:感量为0.0 1g和0.0 0 00 1g。4.8 5 0m L具塞P V C离心管。4.9 离心机:转速60 0 0r/m i n。4.1 0 展青霉素固相净化柱(以下简称净化柱):混合填料净化柱M y c o s e pTM2 2 8或相当者。4.1 1 混合型阴离子交换柱:N-乙烯吡咯烷酮-二乙烯基苯共聚物基质-CH2N(CH3)2C4H9+为填料的固相萃取柱(6m L,1 5 0m g)或相当者。使用前分别用6m L甲醇和6m L水预淋洗并保持柱体湿润。4.1 2 1 0 0m L梨形烧瓶。4.1 3 固相萃取装置。4.1 4 旋转蒸发仪。4.1 5 氮吹仪。5 分析步骤5.1 试样制备5.1.1 液体样品(苹果汁、山楂汁等)样品倒入匀浆机中混匀,取其中任意的1 0 0g(或m L)样品进行检测。酒类样品需超声脱气1h或4低温条件下存放过夜脱气。5.1.2 固体样品(山楂片、果丹皮等)样品用高速粉碎机将其粉碎,混合均匀后取样品1 0 0g用于检测。果丹皮等高黏度样品经液氮冻干后立即用高速粉碎机将其粉碎,混合均匀后取样品1 0 0g用于检测。G B5 0 0 9.1 8 52 0 1 63 5.1.3 半流体(苹果果泥、苹果果酱、带果粒果汁等)样品在组织捣碎机中捣碎混匀后,取1 0 0g用于检测。5.2 试样提取及净化5.2.1 混合型阴离子交换柱法5.2.1.1 试样提取5.2.1.1.1 澄清果汁称取2g试样(准确至0.0 1g),加入5 0L同位素内标工作液混匀待净化。5.2.1.1.2 苹果酒称取1g试样(准确至0.0 1g),加入5 0L同位素内标工作液,加水至1 0m L混匀后待净化。5.2.1.1.3 固体、半流体试样称取1g试样(准确至0.0 1g)于5 0m L离心管中,加入5 0L同位素内标工作液,静置片刻后,再加入1 0m L水与7 5L果胶酶混匀,室温下避光放置过夜后,加入1 0.0m L乙酸乙酯,涡旋混合5m i n,在60 0 0r/m i n下离心5m i n,移取乙酸乙酯层至1 0 0m L梨形烧瓶。再用1 0.0m L乙酸乙酯提取一次,合并两次乙酸乙酯提取液,在4 0水浴中用旋转蒸发仪浓缩至干,以5.0m L乙酸溶液溶解残留物,待净化处理。5.2.1.2 净化将待净化液转移至预先活化好的混合型阴离子交换柱中,控制样液以约3m L/m i n的速度稳定过柱。上样完毕后,依次加入3m L的乙酸铵溶液、3m L水淋洗。抽干混合型阴离子交换柱,加入4m L甲醇洗脱,控制流速约3m L/m i n,收集洗脱液。在洗脱液中加入2 0L乙酸,置4 0下用氮气缓缓吹至近干,用乙酸溶液定容至1.0m L,涡旋3 0s溶解残留物,0.2 2m滤膜过滤,收集滤液于进样瓶中以备进样。按同一操作方法做空白试验。5.2.2 净化柱法5.2.2.1 试样提取5.2.2.1.1 液体试样称取4g试样(准确至0.0 1g)于5 0m L离心管中,加入2 5 0L同位素内标工作液,加入2 1m L乙腈,混合均匀,在60 0 0r/m i n下离心5m i n,待净化。5.2.2.1.2 固体、半流体试样称取1g试样(准确至0.0 1g)于5 0m L离心管中,加入1 0 0L同位素内标工作液,混匀后静置片刻,再加入1 0m L水与1 5 0L果胶酶溶液混匀,室温下避光放置过夜后,加入1 0.0m L乙酸乙酯,涡旋混合5m i n,在60 0 0r/m i n下离心5m i n,移取乙酸乙酯层至梨形烧瓶。再用1 0.0m L乙酸乙酯提取一次,合并两次乙酸乙酯提取液,在4 0水浴中用旋转蒸发仪浓缩至干,以2.0m L乙酸溶液溶解残留物,再加入8m L乙腈,混匀后待净化。G B5 0 0 9.1 8 52 0 1 64 5.2.2.2 净化按照所使用净化柱的说明书操作,将提取液通过净化柱净化,弃去初始的1m L净化液,收集后续部分。用吸量管准确吸取5.0m L净化液,加入2 0L乙酸,在4 0下用氮气缓缓地吹至近干,加入乙酸溶液定容至1m L,涡旋3 0s溶解残渣,过0.2 2m滤膜,收集滤液于进样瓶中以备进样。按同一操作方法做空白试验。注:上述方法的样品提取和净化部分,包括混合型阴离子交换柱净化和净化柱净化方法,可根据实际情况,选择其中一种方法即可。5.3 仪器参考条件5.3.1 色谱参考条件a)色谱柱:T3色谱柱,柱长1 0 0mm,内径2.1mm,粒径1.8m,或相当者;b)流动相:A相:水,B相:乙腈;c)梯度洗脱条件:5%B(0m i n 7m i n),1 0 0%B(7.2m i n 9m i n),5%B(9.2m i n 1 3m i n);d)流速:0.3m L/m i n;e)色谱柱柱温:3 0;f)进样量:1 0L。5.3.2 质谱参考条件a)检测方式:多离子反应监测(MRM);b)质谱参数及离子选择参数参见表B.1;c)子离子扫描图参见图B.1和图B.2;d)液相色谱-质谱图见图B.3。5.4 标准曲线的制作将标准系列工作溶液由低到高浓度进样检测,以标准系列工作溶液中展青霉素的浓度为横坐标,以展青霉素色谱峰与内标色谱峰的峰面积比值为纵坐标,绘制得到标准曲线。5.5 测定将试样溶液注入液相色谱-质谱仪中,测得相应的峰面积,由标准曲线得到试样溶液中展青霉素的浓度。5.6 定性试样中目标化合物色谱峰的保留时间与相应标准色谱峰的保留时间相比较,变化范围在2.5%之内。每种化合物的质谱定性离子必须出现,至少应包括一个母离子和两个子离子,而且同一检测批次,对同一化合物,样品中目标化合物的两个子离子的相对丰度比与浓度相当的标准溶液相比,其允许偏差不超过表1规定的范围。表1 定性时相对离子丰度的最大允许偏差相对离子丰度5 0%2 0%5 0%1 0%2 0%1 0%允许相对偏差2 0%2 5%3 0%5 0%G B5 0 0 9.1 8 52 0 1 65 6 分析结果的表述试样中展青霉素的含量按式(1)计算:X=Vmf(1)式中:X 试样中展青霉素的含量,单位为微克每千克或微克每升(g/k g或g/L);由标准曲线计算所得的试样溶液中展青霉素的浓度,单位为纳克每毫升(n g/m L);V 最终定容体积,单位毫升(m L);m 试样的称样量,单位克(g);f 稀释倍数。计算结果保留三位有效数字。7 精密度在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的1 5%。8 其他本方法的检出限和定量限见表2。表2 不同试样采用不同前处理方法的检出限和定量限净化方式澄清果汁苹果酒固体、半流体检出限/(g/k g)定量限/(g/k g)检出限/(g/k g)定量限/(g/k g)检出限/(g/k g)定量限/(g/k g)混合型阴离子交换柱1.551.5531 0净化柱法31 031 062 0第二法 高效液相色谱法9 原理样品(浊汁、半流体及固体样品用果胶酶酶解处理)中的展青霉素经提取,展青霉素固相净化柱净化、浓缩后,液相色谱分离,紫外检测器检测。外标法定量。1 0 试剂和材料除非另有说明,本方法使用的试剂均为分析纯,水为G B/T6 6 8 2规定的一级水。1 0.1 试剂1 0.1.1 乙腈(CH3C N):色谱纯。G B5 0 0 9.1 8 52 0 1 66 1 0.1.2 甲醇(CH3OH):色谱纯。1 0.1.3 乙酸(CH3C OOH):色谱纯。1 0.1.4 乙酸乙酯(CH3C OO CH2CH3)。1