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GB 5009.158-2016 食品安全国家标准 食品中维生素K1的测定.pdf
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GB 5009.158-2016 食品安全国家标准 食品中维生素K1的测定 5009.158 2016 食品安全 国家标准 食品 维生素 K1 测定
中 华 人 民 共 和 国 国 家 标 准G B5 0 0 9.1 5 82 0 1 6食品安全国家标准食品中维生素K1的测定2 0 1 6-1 2-2 3发布2 0 1 7-0 6-2 3实施中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会国 家 食 品 药 品 监 督 管 理 总 局发 布G B5 0 0 9.1 5 82 0 1 6 前 言 本标准代替G B/T5 0 0 9.1 5 82 0 0 3 蔬菜中维生素K1的测定 和G B5 4 1 3.1 02 0 1 0 食品安全国家标准 婴幼儿食品和乳品中维生素K1的测定。本标准与G B/T5 0 0 9.1 5 82 0 0 3相比,主要变化如下:标准名称修改为“食品安全国家标准 食品中维生素K1的测定”;增加了高效液相色谱-荧光检测法;增加了液相色谱-串联质谱法;删除了高效液相色谱-紫外检测法。G B5 0 0 9.1 5 82 0 1 61 食品安全国家标准食品中维生素K1的测定1 范围本标准规定了食品中维生素K1的测定方法。本标准第一法为高效液相色谱-荧光检测法,第二法为液相色谱-串联质谱法,均适用于各类配方食品、植物油、水果和蔬菜中维生素K1的测定。第一法 高效液相色谱-荧光检测法2 原理婴幼儿食品和乳品、植物油等样品经脂肪酶和淀粉酶酶解,正己烷提取样品中的维生素K1后,用C1 8液相色谱柱将维生素K1与其他杂质分离,锌柱柱后还原,荧光检测器检测,外标法定量。水果、蔬菜等低脂性植物样品,用异丙醇和正己烷提取其中的维生素K1,经中性氧化铝柱净化,去除叶绿素等干扰物质。用C1 8液相色谱柱将维生素K1与其他杂质分离,锌柱柱后还原,荧光检测器检测,外标法定量。3 试剂和材料除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为G B/T6 6 8 2规定的一级水。3.1 试剂3.1.1 无水乙醇(CH3CH2OH)。3.1.2 碳酸钾(K2C O3)。3.1.3 无水硫酸钠(N a2S O4)。3.1.4 异丙醇(C3H8O)。3.1.5 正己烷(C6H1 4)。3.1.6 甲醇(CH3OH):色谱纯。3.1.7 四氢呋喃(C4H8O):色谱纯。3.1.8 乙酸乙酯(C4H8O2)。3.1.9 冰乙酸(CH3C OOH):色谱纯。3.1.1 0 氯化锌(Z n C l2):色谱纯。3.1.1 1 无水乙酸钠(CH3C OON a)。3.1.1 2 氢氧化钾(KOH)。3.1.1 3 脂肪酶:酶活力7 0 0U/m g。3.1.1 4 淀粉酶:酶活力1.5U/m g。3.1.1 5 锌粉:粒径5 0m7 0m。G B5 0 0 9.1 5 82 0 1 62 3.2 试剂配制3.2.1 4 0%氢氧化钾溶液:称取2 0g氢氧化钾于1 0 0m L烧杯中,用2 0m L水溶解,冷却后,加水至5 0m L,储存于聚乙烯瓶中。3.2.2 磷酸盐缓冲液(p H 8.0):溶解5 4.0g磷酸二氢钾于3 0 0m L水中,用4 0%氢氧化钾溶液调节p H至8.0,加水至5 0 0m L。3.2.3 正己烷-乙酸乙酯混合液(9 0+1 0):量取9 0m L正己烷,加入1 0m L乙酸乙酯,混匀。3.2.4 流动相:量取甲醇9 0 0m L,四氢呋喃1 0 0m L,冰乙酸0.3m L,混匀后,加入氯化锌1.5g,无水乙酸钠0.5g,超声溶解后,用0.2 2m有机系滤膜过滤。3.3 标准品维生素K1(C3 1H4 6O2,C A S号:8 4-8 0-0):纯度9 9%,或经国家认证并授予标准物质证书的标准物质。3.4 标准溶液配制3.4.1 维生素K1标准贮备溶液(1m g/m L):准确称取5 0m g(精确至0.1m g)维生素K1标准品于5 0m L容量瓶中,用甲醇溶解并定容至刻度。将溶液转移至棕色玻璃容器中,在-2 0下避光保存,保存期2个月。标准储备液在使用前需要进行浓度校正,校正方法参照附录A。3.4.2 维生素K1标准中间液(1 0 0g/m L):准确吸取标准贮备溶液1 0.0 0m L于1 0 0m L容量瓶中,加甲醇至刻度,摇匀。将溶液转移至棕色玻璃容器中,在-2 0下避光保存,保存期2个月。3.4.3 维生素K1标准使用液(1.0 0g/m L):准确吸取标准中间液1.0 0m L于1 0 0m L容量瓶中,加甲醇至刻度,摇匀。3.4.4 标准系列工作溶液:分别准确吸取维生素K1标准使用液0.1 0m L、0.2 0m L、0.5 0m L、1.0 0m L、2.0 0m L、4.0 0m L于1 0 m L容量瓶中,加甲醇定容至刻度,维生素K1标准系列工作溶液浓度分别为1 0n g/m L、2 0n g/m L、5 0n g/m L、1 0 0n g/m L、2 0 0n g/m L、4 0 0n g/m L。3.5 材料3.5.1 中性氧化铝:粒径5 0m1 5 0m。3.5.2 中性氧化铝柱:2g/6m L,填料中含1 0%水,可直接购买商品柱,也可自行装填。注:中性氧化铝柱装填方法:a)填料处理:取2 0 0g中性氧化铝于5 0 0m L的广口瓶中,于1 5 0干燥箱中烘烤2h,加盖后于干燥器中冷却至室温,缓慢加入2 0m L纯水,边加边摇,加完后加上瓶盖,放入8 0烘箱中3m i n 5m i n,取出后,剧烈振摇,直至瓶内氧化铝自由流动,无结块,置于干燥器中冷却3 0m i n,备用。b)层析柱装填:取6m L的针筒式柱套,加入筛板,称取2.0 0g上述经脱活化处理的填料,再加入一块筛板,用装填工具压紧。3.5.3 锌柱:柱长5 0mm,内径4.6mm,锌柱可直接购买商品柱,也可自行装填。注:a)锌柱填装方法:将锌粉密集装入不锈钢材质的柱套(柱长5 0mm,内径4.6 mm)中。装柱时,应连续少量多次将锌粉装入柱中,边装边轻轻拍打,以使装入的锌粉紧密。b)锌柱接入仪器前,须将液相色谱仪所用管路中的水排干。3.5.4 微孔滤头:带0.2 2m有机系微孔滤膜。4 仪器和设备4.1 高效液相色谱仪:带荧光检测器。G B5 0 0 9.1 5 82 0 1 63 4.2 匀浆机。4.3 高速粉碎机。4.4 组织捣碎机。4.5 涡旋振荡器。4.6 恒温水浴振荡器。4.7 p H计:精度0.0 1。4.8 天平:感量为1m g和0.1m g。4.9 离心机:转速60 0 0r/m i n。4.1 0 旋转蒸发仪。4.1 1 氮吹仪。4.1 2 超声波振荡器。5 分析步骤5.1 试样制备米粉、奶粉等粉状样品经混匀后,直接取样;片状、颗粒状样品,经样本粉碎机磨成粉,储存于样品袋中备用;液态乳、植物油等液态样品摇匀后,直接取样;水果、蔬菜等取可食部分,水洗干净,用纱布擦去表面水分,经匀浆器匀浆,储存于样品瓶中备用。制样后,需尽快测定。5.2 试样处理警示:处理过程应避免紫外光直接照射,尽可能避光操作。5.2.1 婴幼儿食品和乳品、植物油5.2.1.1 酶解准确称取经均质的试样1g 5g(精确到0.0 1g,维生素K1含量不低于0.0 5g)于5 0m L离心管中,加入5m L温水溶解(液体样品直接吸取5m L,植物油不需加水稀释),加入磷酸盐缓冲液(p H 8.0)5m L,混匀,加入0.2g脂肪酶和0.2g淀粉酶(不含淀粉的样品可以不加淀粉酶),加盖,涡旋2m i n3m i n,混匀后,置于3 72恒温水浴振荡器中振荡2h以上,使其充分酶解。5.2.1.2 提取取出酶解好的试样,分别加入1 0m L乙醇及1g碳酸钾,混匀后加入1 0m L正己烷和1 0m L水,涡旋或振荡提取1 0m i n,60 0 0r/m i n离心5m i n,或将酶解液转移至1 5 0m L的分液漏斗中萃取提取,静置分层(如发生乳化现象,可适当增加正己烷或水的加入量,以排除乳化现象),转移上清液至1 0 0m L旋蒸瓶中,向下层液再加入1 0m L正己烷,重复操作1次,合并上清液至上述旋蒸瓶中。5.2.1.3 浓缩将上述正己烷提取液旋蒸至干(如有残液,可用氮气轻吹至干),用甲醇转移并定容至5m L容量瓶中,摇匀,0.2 2m滤膜过滤,滤液待进样。不加试样,按同一操作方法做空白试验。G B5 0 0 9.1 5 82 0 1 64 5.2.2 水果、蔬菜样品5.2.2.1 提取准确称取1g 5g(精确到0.0 1g,维生素K1含量不低于0.0 5g)经均质匀浆的样品于5 0m L离心管中,加入5 m L异丙醇,涡旋1 m i n,超声5 m i n,再加入1 0 m L正己烷,涡旋振荡提取3 m i n,60 0 0r/m i n离心5m i n,移取上清液于2 5m L棕色容量瓶中,向下层溶液中加入1 0m L正己烷,重复提取1次,合并上清液于上述容量瓶中,正己烷定容至刻度,用移液管准确分取上清液1m L5m L(视样品中维生素K1含量而定)至1 0m L试管中,氮气轻吹至干,加入1m L正己烷溶解,待净化。5.2.2.2 净化、浓缩将上述1m L提取液用少量正己烷转移至预先用5m L正己烷活化的中性氧化铝柱中,待提取液流至近干时,5m L正己烷淋洗,6m L正己烷-乙酸乙酯混合液洗脱至1 0m L试管中,氮气吹干后,用甲醇定容至5m L,过0.2 2m滤膜,滤液供分析测定。不加试样,按同一操作方法做空白试验。5.3 色谱参考条件a)色谱柱:C1 8柱,柱长2 5 0mm,内径4.6mm,粒径5m,或具同等性能的色谱柱;b)锌还原柱:柱长5 0mm,内径4.6 mm;c)流动相:按3.2.4配制;d)流速:1m L/m i n;e)检测波长:激发波长为2 4 3n m,发射波长为4 3 0n m;f)进样量:1 0L;g)标准溶液的色谱图见附录B。5.4 标准曲线的制作采用外标标准曲线法进行定量。将维生素K1标准系列工作液分别注入高效液相色谱仪中,测定相应的峰面积,以峰面积为纵坐标,以标准系列工作液浓度为横坐标绘制标准曲线,计算线性回归方程。5.5 试样溶液的测定在相同色谱条件下,将制备的空白溶液和试样溶液分别进样,进行高效液相色谱分析。以保留时间定性,峰面积外标法定量,根据线性回归方程计算出试样溶液中维生素K1的浓度。6 分析结果的表述试样中维生素K1的含量按式(1)计算:X=V1V31 0 0mV210 0 0(1)式中:X 试样中维生素K1的含量,单位为微克每百克(g/1 0 0g);由标准曲线得到的试样溶液中维生素K1的浓度,单位为纳克每毫升(n g/m L);V1 提取液总体积,单位为毫升(m L);V3 定容液的体积,单位为毫升(m L);G B5 0 0 9.1 5 82 0 1 65 1 0 0 将结果单位由微克每克换算为微克每百克样品中含量的换算系数;m 试样的称样量,单位为克(g);V2 分取的提取液体积(婴幼儿食品和乳品、植物油V1=V2),单位为毫升(m L);10 0 0 将浓度单位由n g/m L换算为g/m L的换算系数。计算结果保留三位有效数字。7 精密度在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的1 0%。8 其他婴幼儿食品和乳品、植物油,当取样量为1g,定容5 m L时,检出限为1.5g/1 0 0g,定量限为5g/1 0 0g;果蔬样品当取样量为5g,提取液分取5m L,定容5m L时,检出限为1.5g/1 0 0g,定量限为5g/1 0 0g。第二法 液相色谱-串联质谱法9 原理婴幼儿食品和乳品、植物油等样品经脂肪酶和淀粉酶酶解,用正己烷提取样品中的维生素K1后,用C1 8液相色谱柱将维生素K1与其他杂质分离,串联质谱检测,同位素内标法定量。水果、蔬菜等低脂性植物样品,用异丙醇和正己烷提取其中的维生素K1,经中性氧化铝柱净化,去除叶绿素等干扰物质。用C1 8液相色谱柱将维生素K1与其他杂质分离,串联质谱检测,同位素内标法定量。1 0 试剂和材料除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为G B/T6 6 8 2规定的一级水

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