GB 5009.259-2016 食品安全国家标准 食品中生物素的测定.pdf

中 华 人 民 共 和 国 国 家 标 准G B5 0 0 9.2 5 92 0 1 6食品安全国家标准食品中生物素的测定2 0 1 6-0 8-3 1发布2 0 1 7-0 3-0 1实施中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会发 布G B5 0 0 9.2 5 92 0 1 6 前 言 本标准代替G B5 4 1 3.1 92 0 1 0 婴幼儿食品和乳品中游离生物素的测定。本标准与G B5 4 1 3.1 92 0 1 0相比,主要变化如下:标准名称修改为“食品安全国家标准 食品中生物素的测定”;修改了标准曲线管和待测液管制备的表述方式;修改了测定步骤表达方式;增加了谷薯类、肉类、新鲜果蔬、藻类试样、蛋类、豆类、坚果类、内脏、强化生物素的食品处理过程;删除了仪器和设备中通用玻璃器皿的描述。G B5 0 0 9.2 5 92 0 1 61 食品安全国家标准食品中生物素的测定1 范围本标准规定了食品中生物素的测定方法。本标准适用于食品中生物素的测定。2 原理生物素是植物乳杆菌(L a c t o b a c i l l u sp l a n t a r u m)生长所必需的营养素。在生物素测定培养基中,植物乳杆菌的生长与待测试样中生物素含量呈线性关系,根据透光率与标准工作曲线进行比较,即可计算出试样中待测物质的含量。3 试剂和材料除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为G B/T6 6 8 2规定的二级水。3.1 试剂3.1.1 无水乙醇(C2H6O)。3.1.2 氢氧化钠(N a OH)。3.1.3 盐酸(HC l)。3.1.4 柠檬酸盐。3.1.5 -淀粉酶:1.5U/m g。3.1.6 木瓜蛋白酶:5U/m g。3.1.7 硫酸(H2S O4)。3.2 试剂配制3.2.1 乙醇溶液(5 0%):量取5 0 0m L无水乙醇与5 0 0m L水混匀。3.2.2 氢氧化钠溶液(0.5m o l/L):称取2 0g氢氧化钠,溶于10 0 0m L水中,混匀。3.2.3 氯化钠溶液(0.8 5%):称取8.5g氯化钠,加水溶解并稀释至10 0 0m L,混匀。3.2.4 盐酸溶液(1m o l/L):吸取8 3m L盐酸,用水稀释至10 0 0m L,混匀。3.2.5 柠檬酸盐缓冲液(p H4.5):称取1.5g柠檬酸至一个1 0 0m L带磁力搅拌器的烧杯中,加入约5 0m L蒸馏水至溶解,再加入1 2m L的N a OH(1m o l/L),调节p H至4.5(用0.1m o l/LHC l),将溶液转入1 0 0m L容量瓶中,并用蒸馏水定容。该缓冲液可在28储存3d。3.2.6 蛋白酶-淀粉酶液:分别称取2 0 0 m g木瓜蛋白酶和-淀粉酶,加入2 0 m L水研磨至匀浆,30 0 0r/m i n离心5m i n 1 0m i n。现用现配。3.2.7 硫酸溶液(3%):量取3 0m L硫酸加入到10 0 0m L水混匀。G B5 0 0 9.2 5 92 0 1 62 3.3 标准品生物素(d-B i o t i n或V i t a m i nH)标准品(C1 0H1 6N2O3S):纯度9 9%。3.4 标准溶液配制3.4.1 生物素标准储备液(1 0 0g/m L):精确称取1 0 0m g生物素标准品,用乙醇溶液(5 0%)溶解并转移至10 0 0m L容量瓶中,定容至刻度。储存于棕色瓶中,于24冰箱保存1 2个月。3.4.2 生物素标准中间液(1.0g/m L):准确吸取1.0 0m L生物素标准储备液置于1 0 0m L棕色容量瓶中,用乙醇溶液(5 0%)稀释并定容至刻度,混匀后储存于瓶中24冰箱保存6个月。3.4.3 生物素标准工作液(1 0n g/m L):准确吸取1.0 0m L生物素标准中间液置于1 0 0m L容量瓶中,用水稀释定容至刻度,混匀。临用前现配。3.4.4 标准使用工作液(1 0n g/m L):分两个浓度,高浓度溶液的浓度为0.2n g/m L;低浓度溶液的浓度为0.1n g/m L。从工作液中吸取两次各5m L,用水分别定容到2 5 0m L和5 0 0m L。3.5 培养基3.5.1 乳酸杆菌琼脂培养基:可按附录A配制。3.5.2 乳酸杆菌肉汤培养基:可按附录A配制。3.5.3 生物素测定用培养基:可按附录A配制。注:一些商品化合成培养基效果良好,商品化合成培养基按标签说明进行配制。4 仪器和设备4.1 天平:感量0.1m g。4.2 恒温培养箱:3 71。4.3 压力蒸汽消毒器:1 2 1(0.1 0m P a 0.1 2m P a)。4.4 漩涡振荡器。4.5 离心机:转速20 0 0r/m i n。4.6 分液器:0m L1 0m L。4.7 可调式电炉。4.8 p H计:精度0.0 1。4.9 分光光度计。4.1 0 超净工作台。注:玻璃仪器使用前,用活性剂(月桂磺酸钠或家用洗涤剂加入到洗涤用水中即可)对硬玻璃测定管及其他必要的玻璃器皿进行清洗,清洗之后2 0 0干热2h。5 菌种的制备与保存5.1 菌种植物乳杆菌L a c t o b a c i l l u sp l a n t a r u m(AT C C8 0 1 4)。5.2 储备菌种的制备5.2.1 将菌种植物乳杆菌L a c t o b a c i l l u sp l a n t a r u m(AT C C8 0 1 4)转接至乳酸杆菌琼脂培养基中,在G B5 0 0 9.2 5 92 0 1 63 3 71恒温培养箱中培养2 0h2 4h,取出后放入24冰箱中保存。每月至少传种一次,作为储备菌株保存。5.2.2 将储备菌株接种至乳酸杆菌琼脂培养基中,在3 71恒温培养箱中培养2 0h2 4h以活化菌株,用于接种液的制备。保存数周以上的储备菌种,不能立即用作接种液制备,试验前应连续传种2代3代以保证细菌活力。5.3 接种液的制备用接种环将活化的菌株转种至已灭菌的乳酸杆菌肉汤中,于3 71恒温培养箱中培养1 6h2 0h。取出后将菌悬液离心弃去上清液,再用氯化钠溶液(0.8 5%)振匀并离心弃去上清液,如此三次。最后用氯化钠溶液(0.8 5%)稀释至透光率8 0%。6 分析步骤6.1 试样制备谷薯类、豆类、乳粉等试样需粉碎、研磨、过筛(筛板孔径0.3mm0.5mm);肉、蛋、鱼、坚果等用打碎机制成食糜;果蔬、半固体食品等试样需匀浆混匀;液体试样用前振摇混合。4 冰箱保存,1周内测定。6.2 试样提取6.2.1 薯类、肉类、乳类、新鲜果蔬、藻类试样、蛋类、豆类、坚果类、动物内脏等天然食品。准确称取适量均质样品(m)(约含0.2g 0.5g生物素),精确至0.0 0 1g,至一个5 0m L锥形瓶中,加入3 0m L柠檬酸缓冲液振摇后于1 2 1高压水解1 5m i n。样品取出后迅速冷却至室温,加入1m L蛋白酶-淀粉酶溶液置于3 61恒温培养箱内温育酶解1 6h2 0h,9 5水浴中加热3 0m i n,然后迅速冷却至室温,转至1 0 0m L容量瓶中,用水定容至刻度(V1)。6.2.2 婴幼儿配方食品、谷物类等制品(包括原生和添加的生物素):准确称取适量样品(m)(约含0.2g 0.5g生物素),精确至0.0 0 1g,至一个2 5 0m L锥形瓶中加入硫酸溶液1 0 0m L,1 2 1 水解3 0m i n,冷却后用氢氧化钠溶液调节p H至4.50.2,转到2 5 0m L容量瓶中,用水定容,充分混合。用滤纸过滤,弃去最初的几毫升。吸取滤液5m L,加入约2 0m L水,用氢氧化钠溶液调p H为6.80.2,转至1 0 0m L容量瓶中,用水定容至刻度(V1)。6.2.3 强化生物素的饮料或维生素预混料等样品:液体饮料加5m L1 0m L样品至1 0 0m L锥形瓶中,加5 0m L水,混匀,转入1 0 0m L容量瓶中,用水定容至刻度(V1);维生素预混料:准确称取适量样品(m),精确至0.0 0 1g,到5 0 0m L锥形瓶中,加入约3 0 0m L水,混匀。调整p H到8.00.2,转入10 0 0m L容量瓶中,用水定容至刻度(V1)。6.3 稀释根据试样中生物素含量用水对试样提取液进行适当稀释,使稀释后试样提取液中生物素含量在0.0 1n g/m L0.1n g/m L范围内。6.4 测定系列管制备6.4.1 试样系列管取4支试管,分别加入1.0m L、2.0m L、3.0m L、4.0m L试样提取液,补水至5.0m L,加入5.0m L生物素测定用培养液,混匀。每个梯度做3个平行。G B5 0 0 9.2 5 92 0 1 64 6.4.2 标准系列管取试管分别加入标准使用工作液低浓度0.0 m L(未接种空白)、0.0 m L(接种空白)、1.0 m L、2.0m L、3.0m L、4.0m L、5.0 0m L、和高浓度3.0m L、4.0m L、5.0m L,补水至5.0 0m L,相当于标准系列管中生物素含量为0.0 0n g、0.0 0n g、0.1n g、0.2n g、0.3n g、0.4n g、0.5n g、0.6n g、0.8n g、1.0 0n g。加5.0m L生物素测定用培养液,混匀。每个梯度做3个平行,绘制标准曲线时,以每点均值计算。6.5 培养6.5.1 灭菌:所有的试管盖上试管帽,放入灭菌釜内,1 2 1(0.1 0m P a 0.1 2m P a)灭菌5m i n。6.5.2 接种和培养:试管快速冷却至室温,在无菌操作条件下,将接种液转入无菌针管,向每支测定管接种一滴(约5 0L)其中标准曲线管中未接种空白和样品空白除外。置于3 71恒温培养箱中培养1 9h2 0h,直至获得最大混浊度,即再培养2h透光率无明显变化。6.6 测定将培养好的测定管用漩涡混匀器混匀。用厚度为1c m比色杯,于5 5 0n m处,以接种空白管调节透光率为1 0 0%,然后依次测定标准系列管、试样系列管吸光值。如果未接种空白对照管有明显的细菌增长,说明可能有杂菌混入,需重做试验。注:试样提取液也可采用预先包埋了菌种的微生物法生物素试剂盒测定,效果相当。6.7 分析结果表述6.7.1 标准曲线:以标准系列管生物素含量为横坐标,吸光值为纵坐标,绘制标准曲线。6.7.2 结果计算:从标准曲线查得样液相应含量(cx),如果每个试样的3个测试管中有2个值落在0.0 1n g 0.1 0n g范围内,且每个测试管之间吸光值偏差小于1 0%,则按下式进行结果计算。测定液浓度按式(1)计算:c=cxVx(1)式中:c 样液生物素浓度,单位为纳克每毫升(n g/m L);cx 从标准曲线上查得待测样液生物素含量,单位为纳克(n g);Vx 制备系列管时吸取的试样提取液体积,单位为毫升(m L)。样品中生物素含量按式(2)计算:X=cfm1 0 010 0 0(2)式中:X 样品中生物素含量,单位为微克每百克或毫升(g/1 0 0g或m L);c 有效测试管试样中生物素浓度平均值,单位为纳克每毫升(n g/m L);f 样液稀释倍数;m 样品质量,单位为克(g);1 0 0 换算系数;10 0 0 换算系数。计算结果以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示,结果保留三位有效数字。G B5 0 0 9.2 5 92 0 1 65 7 精密度在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的1 0%。8 其他本方法线性范围为0.0 1g/m L0.1g/m L,检出限为2.0g/1 0 0g,定量限为4.0g/1 0 0g。G B5 0 0 9.2 5 92 0 1 66 附 录 A培养基和试剂A.1 乳酸杆菌琼脂培养基A.1.1 成分胨化乳1 5.0g,酵母浸膏5.0g,葡萄糖1 0.0g,番茄汁1 0 0m L,磷酸二氢钾2.0g,聚山梨糖单油酸酯1.0g,加水至10 0 0m L,调节p H至6.80.2(2 55)。A.1.2 制法在A.1.1