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GB
4789.2-2010
食品安全国家标准
食品微生物学检验
菌落总数测定
4789.2
2010
食品安全
国家标准
食品
微生物学
检验
菌落
总数
测定
中华人民共和国国家标准中华人民共和国国家标准GB 4789.22010 食品安全国家标准 食品微生物学检验 菌落总数测定 National food safety standard Food microbiological examination:Aerobic plate count 中 华 人 民 共 和 国 卫 生 部中 华 人 民 共 和 国 卫 生 部 发布 2010-03-26 发布 2010-06-01 实施GB 4789.22010 I 前 言 本标准代替GB/T 4789.2-2008食品卫生微生物学检验 菌落总数测定。本标准与GB/T 4789.2-2008相比,主要修改如下:修改了标准的中英文名称;修改了菌落总数计算公式中的解释;修改了培养基和试剂;删除了第二法 菌落总数PetrifilmTM 测试片法。本标准的附录A是规范性附录。本标准所代替标准的历次版本发布情况为:GB 4789.2-1984、GB 4789.2-1994、GB/T 4789.2-2003、GB/T 4789.2-2008。GB 4789.22010 1 食品安全国家标准 食品微生物学检验 菌落总数测定 1 范围 本标准规定了食品中菌落总数(Aerobic plate count)的测定方法。本标准适用于食品中菌落总数的测定。2 术语和定义 2.1 菌落总数 aerobic plate count 食品检样经过处理,在一定条件下(如培养基、培养温度和培养时间等)培养后,所得每g(mL)检样中形成的微生物菌落总数。3 设备和材料 除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:3.1 恒温培养箱:36 1,30 1。3.2 冰箱:2 5。3.3 恒温水浴箱:46 1。3.4 天平:感量为 0.1 g。3.5 均质器。3.6 振荡器。3.7 无菌吸管:1 mL(具 0.01 mL 刻度)、10 mL(具 0.1 mL 刻度)或微量移液器及吸头。3.8 无菌锥形瓶:容量 250 mL、500 mL。3.9 无菌培养皿:直径 90 mm。3.10 pH 计或 pH 比色管或精密 pH 试纸。3.11 放大镜或/和菌落计数器。4 培养基和试剂 4.1 平板计数琼脂培养基:见附录 A 中 A.1。4.2 磷酸盐缓冲液:见附录 A 中 A.2。GB 4789.22010 2 4.3 无菌生理盐水:见附录 A 中 A.3。5 检验程序 菌落总数的检验程序见图1。图 1 菌落总数的检验程序 6 操作步骤 6.1 样品的稀释 6.1.1 固体和半固体样品:称取 25 g 样品置盛有 225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000 r/min10000 r/min 均质 1 min2 min,或放入盛有 225 mL 稀释液的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打 1 min2 min,制成 1:10 的样品匀液。6.1.2 液体样品:以无菌吸管吸取 25 mL 样品置盛有 225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成 1:10 的样品匀液。36 1 48 h2 h 检 样 25 g(mL)样品+225 mL 稀释液,均质 10 倍系列稀释 选择 2 个3 个适宜稀释度的样品匀液,各取 1 mL 分别加入无菌培养皿内 培 养 计数各平板菌落数 计算菌落总数 每皿中加入 15 mL20 mL 平板计数琼脂培养基,混匀 报 告 GB 4789.22010 3 6.1.3 用 1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取 1:10 样品匀液 1 mL,沿管壁缓慢注于盛有 9 mL 稀释液的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用 1 支无菌吸管反复吹打使其混合均匀,制成 1:100 的样品匀液。6.1.4 按 6.1.3 操作程序,制备 10 倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次,换用 1 次 1 mL 无菌吸管或吸头。6.1.5 根据对样品污染状况的估计,选择 2 个3 个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行 10 倍递增稀释时,吸取 1 mL 样品匀液于无菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。同时,分别吸取 1 mL 空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。6.1.6 及时将 15 mL20 mL 冷却至 46 的平板计数琼脂培养基(可放置于 46 1 恒温水浴箱中保温)倾注平皿,并转动平皿使其混合均匀。6.2 培养 6.2.1 待琼脂凝固后,将平板翻转,36 1 培养 48 h2 h。水产品 30 1 培养 72 h3 h。6.2.2 如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时,可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层琼脂培养基(约 4 mL),凝固后翻转平板,按 6.2.1 条件进行培养。6.3 菌落计数 可用肉眼观察,必要时用放大镜或菌落计数器,记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位(colony-forming units,CFU)表示。6.3.1 选取菌落数在 30 CFU300 CFU 之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于 30 CFU 的平板记录具体菌落数,大于 300 CFU 的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。6.3.2 其中一个平板有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数;若片状菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个平板后乘以2,代表一个平板菌落数。6.3.3 当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时,则将每条单链作为一个菌落计数。7 结果与报告 7.1 菌落总数的计算方法 7.1.1 若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内,计算两个平板菌落数的平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数,作为每 g(mL)样品中菌落总数结果。7.1.2 若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时,按公式(1)计算:(1)式中:N样品中菌落数;C平板(含适宜范围菌落数的平板)菌落数之和;n1第一稀释度(低稀释倍数)平板个数;n2第二稀释度(高稀释倍数)平板个数;d稀释因子(第一稀释度)。dnnCN)1.0(21+=GB 4789.22010 4 示例:稀释度 1:100(第一稀释度)1:1000(第二稀释度)菌落数(CFU)232,244 33,35 上述数据按7.2.2数字修约后,表示为25000或2.5104。7.1.3 若所有稀释度的平板上菌落数均大于 300 CFU,则对稀释度最高的平板进行计数,其他平板可记录为多不可计,结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算。7.1.4 若所有稀释度的平板菌落数均小于 30 CFU,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算。7.1.5 若所有稀释度(包括液体样品原液)平板均无菌落生长,则以小于 1 乘以最低稀释倍数计算。7.1.6 若所有稀释度的平板菌落数均不在30 CFU300 CFU之间,其中一部分小于30 CFU或大于300 CFU 时,则以最接近 30 CFU 或 300 CFU 的平均菌落数乘以稀释倍数计算。7.2 菌落总数的报告 7.2.1 菌落数小于 100 CFU 时,按“四舍五入”原则修约,以整数报告。7.2.2 菌落数大于或等于 100 CFU 时,第 3 位数字采用“四舍五入”原则修约后,取前 2 位数字,后面用 0 代替位数;也可用 10 的指数形式来表示,按“四舍五入”原则修约后,采用两位有效数字。7.2.3 若所有平板上为蔓延菌落而无法计数,则报告菌落蔓延。7.2.4 若空白对照上有菌落生长,则此次检测结果无效。7.2.5 称重取样以 CFU/g 为单位报告,体积取样以 CFU/mL 为单位报告。dnnCN)1.0(21+=24727022.054410)21.0(235332442322=+=GB 4789.22010 5 附录A(规范性附录)培养基和试剂 A.1 平板计数琼脂(plate count agar,PCA)培养基 A.1.1 成分 胰蛋白胨 5.0 g 酵母浸膏 2.5 g 葡萄糖 1.0 g 琼 脂 15.0 g 蒸馏水 1000 mL pH 7.00.2 A.1.2 制法 将上述成分加于蒸馏水中,煮沸溶解,调节pH。分装试管或锥形瓶,121 高压灭菌15 min。A.2 磷酸盐缓冲液 A.2.1 成分 磷酸二氢钾(KH2PO4)34.0 g 蒸馏水 500 mL pH 7.2 A.2.2 制法 贮存液:称取34.0 g的磷酸二氢钾溶于500 mL蒸馏水中,用大约175 mL的1 mol/L氢氧化钠溶液调节pH,用蒸馏水稀释至1 000 mL后贮存于冰箱。稀释液:取贮存液1.25 mL,用蒸馏水稀释至1 000 mL,分装于适宜容器中,121 高压灭菌15 min。A.3 无菌生理盐水 A.3.1 成分 氯化钠 8.5 g 蒸馏水 1 000 mL A.3.2 制法 称取8.5氯化钠溶于1 000 mL蒸馏水中,121 高压灭菌15 min。