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12-去氧佛波醇-13-棕...L通路调控K562细胞凋亡_马立威.pdf
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12 去氧佛波醇 13 通路 调控 K562 细胞 马立威
12-去氧佛波醇-13-棕榈酸酯通过 Fas/FasL 通路调控 K562 细胞凋亡马立威1陈哲2李京3张洪涛3贾永明4刘吉成1(齐齐哈尔医学院1 医药科学研究院,黑龙江齐齐哈尔161006;2 公共卫生学院;3 附属第三医院;4 药学院)摘要 目的探讨 12-去氧佛波醇-13-棕榈酸酯(DP)诱导人白血病 K562 细胞凋亡及可能的分子机制。方法Ho-echst33342/PI 染色后,荧光显微镜下观察不同浓度 DP 作用后的 K562 细胞形态学变化;DNA 琼脂糖凝胶电泳法检测 DP 作用后的细胞 DNA“梯带”;分光光度法检测半胱氨酸蛋白酶(caspase)3 酶的活性;实时定量聚合酶链式反应(qT-PC)法检测caspase3、Fas、FasL mNA 表达;Western 印迹检测 procaspase3、Fas、FasL 蛋白表达。结果荧光显微镜下可见:DP 作用的K562 细胞形态学变化明显;DNA 琼脂糖凝胶电泳可见清晰的梯带,随剂量的增加片段化更加明显;与 control 组比较,DP 的作用使 caspase3 酶活明显增加(P0.05,P0.01);DP 的作用使 caspase3、Fas、FasL mNA 表达明显增加(P0.05,P0.01);DP能明显下调 procaspase3 蛋白表达,明显上调 Fas、FasL 蛋白表达(P0.05,P0.01)。结论Fas/FasL 通路参与 DP 诱导 K562细胞凋亡的调控。关键词 12-去氧佛波醇-13-棕榈酸酯;K562 细胞;Fas/FasL 通路;细胞凋亡中图分类号 733.7 文献标识码 A 文章编号 1005-9202(2023)03-0684-05;doi:10.3969/j.issn.1005-9202.2023.03.045基金项目:齐齐哈尔医学科学院青年博士基金(QMSI2019B-02)通信作者:刘吉成(1958-),男,博士,教授,主要从事天然药物抗肿瘤分子生物学研究。第一作者:马立威(1987-),男,博士,助理研究员,主要从事抗肿瘤药物研究。白血病是造血干细胞的恶性克隆性疾病,恶性程度高、进展快、预后差。按起病的缓急可分为急性白血病和慢性白血病两大类。其中,K562 细胞是慢性白血病中的慢性粒细胞性白血病的典型代表细胞,常被用于抗白血病的药物研究。目前西医对白血病的治疗仍以化疗为主要治疗手段。近年来,由于化疗方案的不断完善,使白血病能够得到一定的缓解,但化疗带来许多的不良结果不容忽视,诸如产生耐药、骨髓抑制、白细胞低易感染、血色素低需输血、血小板低出血等1。而中药具有多靶点、多环节、多效应的作用特点,使得从中药中寻找有效的抗肿瘤成分的研究成为热点,也为探讨中药及其有效成分对白血病的治疗研究提供了重要的方向。狼毒大戟为多年生的草本植物,根入药,其味辛,性平,具有逐水祛痰,散结杀虫的功效。中医记载为毒性中药,作为传统中药材,在临床上常被用来治疗肿瘤、癫痫等;民间用狼毒大戟根与大枣蒸食,用于晚期癌症和癌症术后治疗,也用于抗炎、驱虫等。12-去氧佛波醇-13-棕 榈 酸 酯(DP)有 较 好 的 抗 肿 瘤 效果2 5。本研究旨在探讨 DP 体外抗慢性粒细胞性白血病作用。1材料与方法1.1细胞株白血病 K562 细胞购于中国科学院上海生命科学研究院细胞资源中心,本研究室液氮中保存。1.2实验药物及试剂DP 由齐齐哈尔医学院医药科学研究院天然药物化学实验中心提供,4保存,使用时二甲基亚砜(DMSO)调成所需浓度(10 g/L)。PMI1640培 养 基(Hyclone公 司,批 号:AD21582265),胎 牛 血 清(Hyclone 公 司,批 号:NIJ1221)、双抗(Hyclone 公司,批号:1170005),Ho-echst33342-碘化丙啶(PI)染色液(南京建成试剂公司,批号:20160712),DNA 梯带抽提试剂盒(TaKaa公司,批号:AK1301),半胱氨酸蛋白酶(caspase)3活性检测试剂盒(碧云天试剂公司,批号:c1116),PrimeScriptT reagent Kit、SYB PremixEx Tap、Trizol(TaKaa 公 司,批 号 分 别 为:AK6002、AK8802、AI51028A)、二喹啉甲酸(BCA)蛋白浓度测定试剂盒(康为试剂公司,批号:00071407),发光试剂盒(Thermo 公司,批号:PA194447A),Anti-Fas、Anti-FasL(Abcam 公司,批号分别为:82419、15285),Anti-caspase3、Anti-GAPDH、Anti-rabbit lgG HP-linked(CST 公司,批号分别为:#12、#06、#20)。1.3主要仪器Observer A1 型荧光显微镜(德国Zeiss 公司),3111 型细胞培养箱(美国 Thermo 公司),Safire2 型酶标仪(奥地利 TECAN 公司),IX51型倒置显微镜(日本 OLYMPUS 公司),7300 型实时定量 C 仪(美国 ABI 公司),ChemiDoc MP 型全自486中国老年学杂志 2023 年 2 月第 43 卷动荧光及化学发光系统(美国 BIO-ad 公司)。1.4细胞培养K562 细胞复苏后,接种于细胞培养皿中,用含双抗(青-链霉素)及 10%胎牛血清的PMI1640 培养基培养;置于细胞培养箱(37,5%CO2)中培养,1 2 d 传代 1 次。实验剩余细胞液氮中冻存备用。1.5Hoechst33342/PI 染色检测细胞形态学变化待测细胞样的准备:取生长状态良好的 K562 细胞,细胞计数调整浓度每 2105/ml,接种于 6 孔板中,每孔 2 ml,同时按 DP 浓度分对照(control)组、DP5 g/ml 组、DP 10 g/ml 组、DP 20 g/ml 组共4 组,并对应加入各孔中。按试剂说明书操作:收集药物作用12 h 的各组细胞于4 ml 离心管中,分别加入 Hoechst33342 避光染色 10 min,磷酸盐缓冲液(PBS)洗2 次,加入 PI 避光染色5 min,PBS 洗2 次,后将各组染色细胞分别滴到载玻片上并盖上盖玻片,荧光显微镜下观察拍照。1.6DNA 琼脂糖凝胶电泳检测分析待测细胞准备同 1.5。取出 DP 作用 16 h 的各组细胞于 EP 管中,离心弃上清加入 PBS 重悬细胞,按照 DNA 提取试剂盒说明书操作,分别加入 NaseA、蛋白酶 K、裂解液混匀后放入 70水浴中 10 min;后加入无水乙醇混匀,可见白色絮状沉淀,将带沉淀的液体全部移到 DNA 纯化柱内;经 2 次离心,洗涤液洗涤后,将DNA 纯化柱置于 1.5 ml 的 EP 管上,加入适量洗脱液,室温放置10 min,离心收集到液体即为纯化的总DNA。将得到的各组 DNA 液加至预先制备的琼脂糖凝胶上电泳,电泳结束后取出凝胶,在凝胶成像系统下检测、拍照。1.7分光光度法检测 caspase3 的相对活性待测细胞准备同 1.5。取出 DP 作用 12 h 的各组细胞计数(2.0106)后收集到 EP 管中,加 PBS 重悬细胞,离心弃上清。按试剂盒说明书,各组细胞中加100 l裂解液,冰浴裂解 15 min。4,13 000 r/min离心 15 min,收集上清。按总体积 100 l 设置反应体系:空白组(检测缓冲液 90 l+Ac-DEVD-pNA10 l),样品组(检测缓冲液 80 l+待测样10 l+Ac-DEVD-pNA 10 l),并加至 96 孔酶标板中,在酶标仪 405 nm 处测定吸光度值(OD),同时根据试剂盒提供的标准品(pNA)制备标准曲线,根据标准曲线对应计算各样品的 pNA 值,以 pNA 浓度反映caspase3 酶的相对活性。1.8qT-PC 检测相关基因的表达待测细胞准备同 1.5。取出 DP 作用 12 h 的各组细胞于 1.5 ml的 EP 管中,离心弃上清,每管中加 1 ml Trizon,提取细胞总 NA,测定 NA 浓度及纯度;按照试剂说明书操作:通过逆转录合成 cDNA 后,进行 PC,以-actin 正 义 链:5-CTGGGACGACATGGAGAAAA-3,反义链:5-AAGGAAGGCTGGAAGAGTGC-3作为内参基因,待测基因为 caspase3 正义链:5-AGCAATA-AATGAATGGGCTGAG-3,反义链 5-GTATGGAGAAATGGGCTGTAGG-3、Fas 正义链:5-GCATCTGGAC-CCTCCTACCT-3,反 义 链 5-TCCTCAATTCCAATC-CCTTG-3、FasL 正义链:5-GCACACAGCATCATCTTTGG-3,反义链 5-GGACCTTGAGTTGGACTTGC-3得到各组样本的 Ct 值,并采用相对定量法,按下列公式,计算基因的相对表达量;基因的相对表达量=2Ct注:Ct=(Ct 目的基因Ct对照基因)(Ct内参目的基因Ct 内参对照基因。1.9Western 印迹检测相关蛋白表达取生长状态良好的 K562 细胞,调整细胞浓度为 4.0105/ml,每个培养皿(100 mm)加 8.0 ml,同时加入不同浓度的DP(control 组、5 g/ml 组、10 g/ml 组、20 g/ml组);培养箱中继续孵育 12 h 后收集细胞于 4 ml 的EP 管中,PBS 洗涤 2 次离心弃上清,每个管里加1.0 ml的含有磷酸酶抑制剂和蛋白酶抑制剂的蛋白裂解液,提取细胞总蛋白后,按照二喹啉甲 酸(BCA)试剂盒说明书操作,计算各样品的蛋白浓度。提取的蛋白经 100 水浴变性后,在聚丙烯酰胺凝胶电泳上进行分离,后经过转膜、封闭、一抗GAPDH、caspase3 以无活性的前体(procaspase)3、Fas、FasL 反应、二抗反应后进行曝光、获取图片。1.10数据统计采用 SPSS17.0 软件进行 Dunnett 检验、方差分析。2结果2.1Hoechst33342-PI 染色荧光显微镜下观察可见,正常培养的 K562 细胞,细胞增殖较旺盛,镜下细胞呈弱的蓝色银光,可见部分细胞重叠生长;随着DP 浓度的增加,细胞数目逐渐减少,细胞蓝色亮染数目增多;同时被 PI 染色的细胞数量也增多,红色荧光强度逐渐增强;细胞可见核碎裂、核解体等现象,见图 1。2.2DNA 琼脂糖凝胶电泳control 组电泳图显示为一条区带,DP 作用的各组细胞电泳均呈现“梯形”条带,且随 DP 浓度的增大“梯形”条带变得更加明显,见图 2。586马立威等12-去氧佛波醇-13-棕榈酸酯通过 Fas/FasL 通路调控 K562 细胞凋亡第 3 期图 1DP 作用的 K562 细胞荧光显微镜下观察 Hoechst33342-PI 染色后细胞形态学变化(100)图 2DP 作用的 K562 细胞 DNA 琼脂糖凝胶电泳2.3分光光度法检测 caspase3 酶活性结果随着DP 浓度逐渐增大 pNA 浓度逐渐增加,即 caspase3酶相对活性逐渐增加,与 control 组比较差异有统计学意义(P0.05,P0.01),见表 1。2.4qT-PC 检测相关基因表达与 control 组比较,DP 作用 12 h 的 K562 细胞,根据所得 Ct 值计算:随着 DP 的剂量增加 caspase3、Fas、FasL mNA表达水平均逐渐增高,差异有统计学意义(P0.05,P0.01),见表 1。2.5Western 印迹检测各组 procaspase3 蛋白表达量,随 DP 剂量的增大逐渐降低,Fas 和 FasL 蛋白表达量随 DP 剂量的增大逐渐增加,与 control 组比较差异有统计学意义(P0.05,P0.01)。见表2、图4。表 1DP 作用的 K562 细胞 caspase3 酶相对活性值与 DP 浓度的关系、caspase3、Fas、

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