温馨提示:
1. 部分包含数学公式或PPT动画的文件,查看预览时可能会显示错乱或异常,文件下载后无此问题,请放心下载。
2. 本文档由用户上传,版权归属用户,汇文网负责整理代发布。如果您对本文档版权有争议请及时联系客服。
3. 下载前请仔细阅读文档内容,确认文档内容符合您的需求后进行下载,若出现内容与标题不符可向本站投诉处理。
4. 下载文档时可能由于网络波动等原因无法下载或下载错误,付费完成后未能成功下载的用户请联系客服处理。
网站客服:3074922707
细胞
第一,盖玻片需要过酸,并且自来水、蒸馏水冲洗干净。两张或者以上的玻片很容易因为虹吸作用粘到一起,很容易冲不干净,很容易把两张完全重叠在一起的玻片当成一张,一定要看清楚,晾干片子最好是在消毒饭盒中进行,饭盒底面放上纱布,将玻片斜靠在饭盒侧壁,玻片正面不要接触纱布,否则会粘上毛毛的。然后高压蒸汽灭菌,烤箱中烤干。
第二,爬片前最好用多聚赖氨酸或者层粘蛋白或者胶原溶液处理玻片,未处理过的细胞不容易贴壁,细胞系还好,原代细胞很少能贴得牢。这一步至关重要,否则在后面用PBS洗片时很容易将细胞洗掉。用这些促进细胞贴壁的溶液处理玻片后,放到培养皿之前需要用培养基冲洗一到三遍!层粘蛋白和胶原还好,多聚赖氨酸有几次我没冲结果细胞全部不贴壁。
第三,传代消化下来的细胞一定不要过多稀释,将浓一点的细胞悬液吹打混匀后滴在玻片上,几个小时后再追加培养基。
第四,玻片在培养皿中容易漂起,如果事先在皿中铺上液体很可能会不容易揭下来,或者揭下来时出印子在镜下很难看。漂起的玻片很容易两面都培养出细胞的,这时背面的细胞必须去除,挺难操作的,用PBS冲洗可能会伤到正面的细胞,用小镊子夹玻片很容易夹碎,也很容易脱落,小心点好。
第五,将玻片拿出后一定要记好哪边是正面,最好做玻片时将玻片切成长方形的。目前市场售的多为18mm x 18mm的盖玻片,或者24mmx24mm的盖玻片,正方形,很难分辨反正面,在某个角上打个缺口,对正方形是不中用的。可以用小砂轮切一下改成长方形,至于在某个角上用砂轮做个标记,理论上很简单,实际操作有难度。
第六,上面步骤都没问题后,玻片就需要进一步处理了,这里有几个细节,分述如下:
1.PBS对玻片是冲洗还是浸泡,我个人认为浸泡好,我吃过冲洗的亏,每一步后都要冲洗2-3次,有时还没等试验做完,大部分细胞已经被冲掉了,呵呵!我当时欲哭无泪啊!
2.4%的多聚甲醛或者别的固定液的温度是多少,有人认为4°C的好,有人认为37°C的好,我个人感觉,娇贵的原代细胞先在常温下固定较好,然后放到4°C冰箱中。我发现直接用4°C的溶液会造成细胞冷休克,从片上脱落。
3.用中性树胶粘盖玻片与载玻片时,尽量少滴树胶,一点点就够了,而且至少半个小时以上才能粘牢,防止在水中脱落。否则盖玻片就会移动,背面会出现树胶的印子,镜下很难看,而且擦不掉的。
4.固定好的片子放到冰箱中保存,我倒没怎么试过,我基本上做好的就直接做免疫组化。
滴加细胞悬液的时候,事先细胞一定要混匀。如果细胞比较多,可以直接往培养皿或孔板内滴加细胞悬液,覆盖玻片,轻柔混匀,注意呈“十”字形摇晃。如果细胞数量少,需要把细胞都滴加在玻片上,则要先从边缘开始,然后再往中央滴,这样有利于细胞均匀分布在玻片上。滴的时候速度要慢,让液体依靠表面张力呈薄层覆盖玻片,要防止细胞悬液溢出玻片。这样一般2-4小时后细胞就贴壁了,这时候再补足的培养基,覆盖波片。
细胞爬片
将市售盖玻片放入烧杯中,经过严格的清洗、泡酸过夜、三蒸水冲洗10次,无水乙醇浸泡过夜,锡纸封口,高压灭菌后待用(制作比较麻烦,可以一次多做一些,比较容易碎),我做的是贴壁细胞,不用其他的处理,悬浮细胞要多聚赖氨酸处理,这我没做过。显微镜下观察细胞片生长密度为60~70%后收片,PBS缓冲液反复冲洗3次,再加入其他的荧光染料就可以了。
电镜标本制作,我做的是透视电镜,步骤:
细胞消化后,将细胞悬液转入大试管中以800r/min离心5~10min浓缩,然后将浓缩细胞悬液再置入1.5ml的Ependorf管中,以1500r/min离心10min,完毕后Ependorf管底部的细胞以一粒芝麻大小为宜,沿管壁缓慢加入2.5%戊二醛固定,切忌将细胞团打散。交电镜室,其他的是电镜室的老师做了,好像有清洗、脱水后包埋、超薄切片,醋酸双氧铀、枸橼酸铅双重染色10min等步骤。这你可以向电镜室的老师请教一下!
HE染色:
(1)细胞爬片放入4%多聚甲醛固定10分钟。
(2) PBS冲洗3遍3-5分钟。
(3)0.1 %Triton X-100溶液透化细胞15分钟。
(4) PBS冲洗3遍3-5分钟。
(5)苏木素溶液覆盖细胞染色15分钟。
自来水冲洗终止反应。封片,镜下观察。
第一个问题:我做细胞爬片的HE染色时,是采用的第一种方法,不过固定是采用的是4%多聚甲醛而不是95%的酒精。第二种方法的采用的0.1 %Triton X-100溶液透化细胞膜的做法好像应该是免疫细胞化学时采用的步骤。
具体操作是:用胰酶消化好细胞,充分吹打,使之成单细胞悬液(注意:这一点很重要,关系到将来爬出来片子的质量)
取出消毒的培养皿,可以先加少量培养基(以使玻片与培养皿紧密接触),将玻片小心放入摆放其中,然后将单细胞悬液一滴一滴的滴到玻片上。最后盖上培养皿置于37度5%CO2的暖箱中培养,根据细胞生长状况,24小时或更长时间适时取出爬片。
爬片置于37度PBS中洗三次,每次3到5秒钟,然后在4%多聚甲醛中固定15分钟,然后再用37度去离子水将甲醛冲干净,注意手法轻柔,要不然掉片很厉害。同时操作过程中注意玻片的正反面,要不然真的是前功尽弃。