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Calcein
AM
PI
鉴别
死活
细胞
PI可以用来进行活细胞、死细胞的双重染色
钙黄绿素-AM(Calcein-AM)和碘化丙啶(PI)溶液,它们分别可对活细胞和死细胞染色。Calcein -AM的乙酸甲基酯亲脂性很高,使其可透过细胞膜。尽管Calcein -AM本身并不是荧光分子,但通过活细胞内的酯酶作用,Calcein -AM能脱去AM基,产生的Calcein能发出强绿色荧光(激发:490 nm,发射:515 nm)。因此Calcein -AM仅对活细胞染色。另一方面,作为核染色染料的PI不能穿过活细胞的细胞膜。它穿过死细胞膜的无序区域而到达细胞核,并嵌入细胞的DNA双螺旋从而产生红色荧光(激发:535 nm,发射:617 nm)。由于Calcein和PI-DNA都可被490 nm激发,因此可用荧光显微镜同时观察活细胞和死细胞。用545 nm激发,仅可观察到死细胞。由于不同细胞系的最佳染色条件不同,我们建议个别确定PI和Calcein -AM的合适浓度。 I.试剂 Calcein-AM PI
II.用荧光显微镜观察细胞形态
以HeLa细胞染色为例,请注意不同的细胞种类、不同浓度有不同的观察条件。根据细胞条件,摸索不同条件下的细胞贴壁情况和试剂浓度的配制等最佳条件。 1.染色溶液的配制
1)用1 ml无水DMSO溶解1 mg Calcein-AM,制备成1 mmol/l 的Calcein-AM储备液,-20℃下密闭冷冻保存。
2)用1 ml ddH2O溶解1 mg PI,制备成1.5 mmol/l的PI储备液(1 mg PI/1 ml H2O),-20℃下密闭冷冻保存。
3)将Calcein-AM储备液和PI储备液放置于室温。
4)加10 μl Calcein-AM储备液和15μl PI储备液至5 ml PBS中配制成染色溶液。 Calcein-AM的终浓度为2 μmol/l,PI的终浓度为4μmol/l。
2.细胞染色
1)染色HeLa细胞等贴壁细胞时,先用Trypsin-EDTA等消化细胞,制备成细胞悬液。
2)将细胞悬液离心3分钟(1,000 rpm)。
3)去除上清液,加入PBS缓冲液,细胞数量调整至105 –106 个/ml。再用移液器充分混匀。
4)由于培养基中的血清等含有酯酶,Calcein-AM遇水会分解,会导致空白上升,所以需要离心数次,用PBS洗涤数次直到完全洗净。
5)将200 μl细胞悬液移至小试管中,加入100 μl染色溶液,在37℃下孵育15分钟。
6)在盖玻片上滴加适量的染色的细胞溶液。
7)在荧光显微镜下,先使用490±10 nm波长激发,观察黄绿色的活细胞,还可以同时观察到红色的死细胞,然后用545 nm波长激发,能够看到红色的死细胞。 *在荧光显微镜下观察时,如果背景高,可以用培养基清洗掉细胞外的染料后再观察。
*Calcein-AM溶液和PI溶液可以混合在一起染色,也可以分开进行染色,加入的先后顺序没有影响。
3.染色试剂的最佳浓度
Calcein-AM和PI的最适浓度是根据不同的细胞种类而定,通过以下的操作,我们可以找到不同细胞染色试剂的最佳浓度。
1)通过在0.1%皂苷或0.1-0.5%毛地黄皂苷中孵育10分钟或通过在70%乙醇中孵育30分钟制备死细胞。
2)用0.1-10 μM 的PI溶液对死细胞染色,以便找到仅对细胞核染色而不对细胞质染色的PI浓度。
3)用0.1-10 μM 的Calcein-AM溶液对死细胞染色,以便找到不对细胞质染色的Calcein -AM浓度。接着用该浓度的Calcein -AM对活细胞染色以检验活细胞可否被染色。