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水果蔬菜中主要营养成分含量测定.docx
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水果 蔬菜 主要 营养成分 含量 测定
水果蔬菜中主要营养成分含量测定 学 院:生命科学学院 班 级: 学 号: 姓 名: 水果蔬菜中主要营养成分含量测定 摘 要:以橘子、猕猴桃两种水果及胡萝卜一种蔬菜为材料,依次测定三种材料的VC含量、蛋白质含量以及可溶性糖的含量。测定VC含量时利用氧化型2,6-二氯酚靛酚(DCPIP)在酸性条件下滴定VC酸性溶液,滴定终点为溶液由无色变为粉红色的那一刻。测定蛋白质含量时采用考马斯亮蓝法在595nm处测其吸光度进而计算含量。测定可溶性糖含量时,则采用蒽酮法进行测定。 关键词:滴定法;分光光度法;蒽酮法;VC含量;蛋白质含量;还原糖含量。 子课题一 水果蔬菜中VC提取及含量测定 引 言 Vc 是人类膳食营养中非常重要的维生素之一。它分布于水果(柑橘、草莓、山楂、苹果), 蔬菜(辣椒、西红柿)中,部分饮料中也含有水溶性 Vc。人、猴等在肝脏中缺少一个古洛内酯氧化酶,因此,在体内不能合成 Vc,必须从食物中获得。现在很多商家为了增加产品竞争 力,提高知名度,在很多饮料产品中也加入部分 Vc,例如脉动、激活、水溶 C100 等。缺乏 Vc 易得坏血病(毛细管脆弱,牙龈发炎出血,肌肉出血),所以 Vc 又称为抗坏血酸。 1.1实验原理: 天然 Vc 有还原型和氧化脱氢型两种,还原型 Vc 具有很强的还原性。本实验即利用还原型 Vc 还原染料 2,6-二氯酚靛酚的反应来对其含量进行测定。在酸性条件下,氧化型 2,6-二氯酚靛酚为红色,还原型 Vc 能将红色的氧化型 2,6-二氯酚靛酚还原成无色的还原型 2,6-二氯酚靛酚,同时还原型 Vc 自身被氧化成脱氢型 Vc。 在酸性条件下,利用氧化型 2,6-二氯酚靛酚滴定 Vc 酸性溶液,当溶液由无色变为粉红色 那一刻,即为滴定终点。如无其他杂质干扰,则消耗的染料与样品中还原型 Vc 含量成正比。 1.2材料、仪器与试剂: 材料:橘子、猕猴桃、胡萝卜 仪器: 研钵、锥形瓶、微量滴定管等 试剂:(1)2%的草酸溶液 ;(2)0.2mg/ml 的标准 Vc 溶液(用 2%的草酸溶液配) 。(3)0.1mg/ml 的 2,6 一二氯酚靛酚溶液 (棕色瓶装 4℃保存)。 1.3实验方法: 1.3.1标准液的滴定:(1)取标准 Vc 液 5ml 于锥形瓶中,用 2.6 一二氯酚靛酚滴定至粉红色,15 秒不褪色;(2)取5 ml 2%草酸作空白对照,按以上方法滴定; 1.3.2样品Vc含量的测定:取 1g 水果或蔬菜,加入 2%草酸溶液 3ml 研磨成匀浆,转入 10ml 离心管,再用 4ml 2% 草酸溶液分两次冲洗研钵,一并转入离心管中,3000r/min 离心 10 分钟,上清液转入 25ml 容量瓶并定容,取 5ml 溶液立即用 2,6 一二氯酚靛酚滴定至出现粉红色,15 秒不褪色,重复三次。 1.4结果与讨论 1.4.1 标准液滴定 标准 Vc 溶液 0.1mg/ml 滴定时所消耗的染料体积(ml) (滴定标准 Vc 溶液所用染料体积 减去滴定空白溶液所用染料体积) 每 1 毫升染料溶液所 氧化的 Vc 的量 (mg/ml) (T) 5ml 第一次 第二次 第三次 平 均 0.0714 7 7 7 7 1.4.2样品滴定 样品名称 样品液的总体积(ml) 滴定时所用样品 液的量 (ml) 滴定样品所用染料量Va(ml) 1 2 3 平均 橘子 25ml 5ml 0.4 0.2 0.4 0.333 猕猴桃 4.8 3.85 3.45 4.033 胡萝卜 0.15 0.25 0.2 0.2 1.4.3结果计算 水果蔬菜的 Vc 含量(mg/g)=[(Va*T*25)/5]*100% Va:滴定样品所用染料量(ml) T: 每 1 毫升染料溶液所氧化的 Vc 量(mg) 由此可得 橘子的 Vc 含量(mg/g)=11.9047% 猕猴桃的 Vc 含量(mg/g)=144.04836% 胡萝卜的 Vc 含量(mg/g)=7.1429% 1.4.4讨论 由实验数据可得,在常见果蔬中,猕猴桃中Vc含量是相对较大的。为了准确测定Vc含量,需要加入适宜的提取剂以延长稳定时间,提高提取率。经查阅相关文献了解到,2%草酸、5%冰乙酸、5%三氯乙酸作为提取剂可提高Vc的提取率。 子课题二 水果蔬菜和饮料中蛋白质提取及含量测定 引 言 蛋白质含量的测定广泛应用于生产实践、医药卫生等各个领域,如测定牛奶等食品中蛋白质的含量作为其营养成分的参考值,测定病人尿液中蛋白质的含量以检测其是否有某种疾病等,因而测定蛋白质的含量具有非常重要的意义。由于蛋白质本身具有一系列的特点(如具有等电点、富含有机氮、含有肽键、存在某些含共轭双键的氨基酸残基、可与某些染料结合等),从而达到测定蛋白质含量的目的。蛋白质诸多特点的存在决定了它会有不同的测定方法,同时由于多种非蛋白组分的存在和干扰以及各种方法本身的局限性(适用条件),每一种测定方法都有各自的优缺点,目前常用的蛋白质含量测定方法有四种:凯氏定氮法、Folin-酚法、考马斯亮蓝(G-250)法、紫外吸收法,其中后三种方法最常用。本实验则选择用考马斯亮蓝(G-250)法。 2.1实验原理:考马斯亮蓝(G-250)染色法测定蛋白质含量属于染料结合法的一种,考马斯亮蓝(G-250)在酸性溶液中,游离状态下为棕红色,当它与蛋白质通过范德华键结合后,变为蓝色,蛋白质染料复合物对595nm可见光有最大光吸收,在一定范围内其OD值与蛋白含量成正比。 2.2材料、仪器与试剂: 材料:橘子、猕猴桃、胡萝卜 仪器:可见光分光光度计、研钵、离心机等 试剂:考马斯亮蓝(G-250)染色液、0.25mg/ml牛血清蛋白 2.3实验方法 2.3.1标准曲线的测定:取7支试管分别加入0.0;0.10;0.20;0.30;0.40;0.50ml的牛血清蛋白溶液,用水补足到0.50ml,每管再加5ml染色液,立即摇匀,置室温下放置5min,然后测量OD值,绘制标准曲线。 2.3.2样品蛋白质提取方法:取2克水果或蔬菜,加入水3ml研磨成浆,转入10ml离心管,再用4ml水冲洗研钵两次,一并转入离心管中,用3000r/min离心10分钟,将上清液转入25ml容量瓶中定容,取0.5ml样品液于试管中,加入考马斯亮蓝(G-250)染色液5ml充分摇匀,放置5分钟,测量OD值,记录结果。 2.3.3样品提取液中蛋白质含量测定:吸取 0.5ml 样品提取液/饮料于试管中,加入考马斯亮蓝 G-250 染色液 5ml,充分混匀,放置 5 分钟,测 A595nm,记录结果,查标准曲线,得蛋白质浓度 X (μg/ml)。 2.4结果与讨论 2.4.1标准曲线的绘制 编号 1(空白) 2 3 4 5 6 标准蛋白(ml) 0.0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 浓度(mg/ml) 0.0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 吸光度值(A) 0 0.137 0.350 0.657 0.762 0.875 2.4.2样品提取液中蛋白质含量测定 样品 橘子 猕猴桃 胡萝卜 吸光度(A) 1.422 1.256 1.287 浓度X(μg/ml) 0.3808 0.3365 0.3448 2.4.3结果计算 样品蛋白质含量(μg/g)=[X•提取液的总体积]/ 样品鲜重(g) 橘子蛋白质含量(μg/g)=4.760 猕猴桃蛋白质含量(μg/g)=4.2063 胡萝卜蛋白质含量(μg/g)=4.310 2.4.4讨论 蛋白质含量是一个重要的生理生化指标,也是果蔬品质和营养的重要评价指标之一。利用考马斯亮蓝法测定蛋白质含量时,用牛血清蛋白作为标准液,其浓度在一定范围内有良好的线性关系。提取蛋白质时,一定要研磨充分并搅拌均匀才能得到更多含量的蛋白质。 子课题三 水果蔬菜中可溶性糖提取及含量测定 引 言 糖时人体所必须的一种营养物质,经人体呼吸之后马上转变为碳水化合物,以供人体能量。糖类物质具有很重要的生物学功能,例如:提供能量,作为物质代谢的碳骨架,细胞的骨架,细胞间识别和生物分子间识作用等。 3.1实验原理 还原糖在碱性条件下加热被氧化成糖酸及其它产物,3,5-二硝基水杨酸则被还原为棕红色的3-氨基-5-硝基水杨酸。在一定范围内,还原糖的量与棕红色物质颜色的深浅成正比关系,利用分光光度计,在540nm波长下测定光密度值。查对标准曲线,便可求出样品中还原糖的含量。 3.2材料、试剂与仪器 材料:橘子、猕猴桃、胡萝卜 仪器:电热恒温水浴锅,分光光度计,电子天平,容量瓶,刻度吸管等 试剂:(1)葡萄糖标准液:l00 µg/ml;(2)浓硫酸;(3)蒽酮试剂:0.2 g 蒽酮溶于 100 ml 浓 H2SO4 中,当日配制使用。 3.3实验方法 3.3.1标准曲线的测定:取 7 支试管,按下表数据配制一系列不同浓度的葡萄糖溶液 在每支试管中立即加入蒽酮试剂 4.0m1,迅速浸于冰水浴中冷却,各管加完后一起浸于沸水浴中,管口加盖,以防蒸发。自水浴重新煮沸起,准确煮沸 l0 min 取出,用冰浴冷却至 室温,在 620 nm 波长下以第一管为空白,迅速测其余各管吸光值。以标准葡萄糖含量(µg) 为横坐标,以吸光值为纵坐标,作出标准曲线。 管号 1 2 3 4 5 6 7 葡萄糖标准液(ml) 0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.6 0.8 葡萄糖含量(µg) 0 10 20 30 40 60 80 3.3.2 样品蛋白质提取方法:取1克水果或蔬菜,加入水3ml研磨成浆,再用4ml水冲洗研钵两次,转入试管中,在50度水浴20min,取出冷却至室温,用3000r/min离心10分钟,将上清液转入25ml容量瓶中定容。 3.3.3样品总糖含量测定:吸取 1 ml 已稀释的提取液于试管中,加入 4.O ml 蒽酮试剂,平行三份;空白管以等量 蒸馏水取代提取液。以下操作同标准曲线制作。根据 A620 平均值在标准曲线上查出葡萄糖的含 量(µg)。 饮料样品需根据测定值适当稀释,以 OD 值不超过 0.7 为准。 3.4结果与讨论 3.4.1标准曲线的绘制: 管号 1 2 3 4 5 6 7 葡萄糖含量(µg) 0 10 20 30 40 60 80 吸光度(A) 0 0.039 0.198 0.304 0.432 0.590 0.739 3.4.2样品提取液中可溶性糖含量的测定: 样品 橘子 猕猴桃 胡萝卜 吸光度(A) 1.287 0.130 0.136 稀释倍数 100 1000 100 3.4.3样品提取液中可溶性糖含量的计算: 样品含糖量(%)=( C×V总×D )/(W×V 测×106)×100% 其中:C:在标准曲线上查出的糖含量(µg) V 总:提取液总体积(ml) V 测:测定时取用体积(ml) D:稀释倍数 s W:样品重量(g) 106:样品重量单位由 g 换算成µg 的倍数 计算得: 橘子含糖量(%)=0.086 猕猴桃含糖量(%)=6.908 胡萝卜含糖量(%)=

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